Фтор электрофорез: Физиотерапия — Областной Клинический Стоматологический Центр — Торговый Дом «Аюрведа»

Разное

Фтор электрофорез: Физиотерапия — Областной Клинический Стоматологический Центр

Содержание

Глубокое фторирование зубов | Фторирование зубов в Краснодаре

Содержание:

Глубокое фторирование зубов – это современная стоматологическая процедура, направленная на насыщение верхних твердых тканей зуба компонентами с высоким содержанием фтора. Для твердых зубных тканей фтор является очень важным химическим элементом. В повседневной жизни наш организм получает фтор вместе с водой и при приеме пищи, но в некоторых случаях может наблюдаться нехватка этого вещества. Нехватка фтора в организме негативно отражается на наших зубах, наблюдается постепенное разрушение зубной эмали, что, в свою очередь, ведет к развитию различных стоматологических заболеваний, самым распространенным из которых является, конечно же, кариес. Чтобы этого не допустить, применяется процедура фторирования зубов.

Обработка поверхности зубов специальными фторсодержащими составами является распространенным и эффективным методом профилактики кариеса и других стоматологических заболеваний. Фторирование зубов является безопасной и безболезненной процедурой. Именно поэтому она рекомендована не только взрослым, но и детям.

Методика проведения фторирования зубов

В современной стоматологии есть несколько методик выполнения фторирования зубов, но суть выполнения процедуры одинакова и заключается в нанесении на зубную поверхность специального активного вещества, содержащего ионы фтора. При взаимодействии с эмалью зуба ионы образуют фторид кальция, именно этот элемент и служит укреплению поверхности зубов.

На сегодняшний день в современной стоматологии применяются следующие методы фторирования зубов: быстрое фторирование, применение фторлака, глубокое фторирование эмали зубов, электрофорез. Среди всех этих методик, по своей эффективности, безопасности и практически полному отсутствию противопоказаний особое место занимает глубокое фторирование зубов. Именно этот метод рекомендуют наши специалисты, и в дальнейшем в этой статье речь будет идти о методике глубокого фторирования зубов.

Глубокое фторирование выделяется среди множества методов и прочно держится на первом месте. При глубоком фторировании активные вещества взаимодействуют не только с поверхностью зуба, но и проникают внутрь зубной эмали, что позволяет добиться значительно большего эффекта.

Более подробно всю процедуру глубокого фторирования зубов можно описать несколькими этапами, следующими друг за другом:

1. Предварительная чистка зубов. Выполняется чистка зубов для удаления налета и зубного камня. На этом этапе часто применяют следующие методы профессиональной чистки зубов: чистка зубов Air Flow, ультразвуковая чистка зубов.
2. Высушивание зубной эмали после чистки и изоляция обрабатываемых участков от воздействия слюны.
3. Нанесение на зубную эмаль специального препарата с высоким содержанием фторида кальция и магния. После нанесения выполняют просушку с помощью специальных ламп.
4. На последнем этапе зубная эмаль обрабатывается специальным лаком с гидроксидом кальция. Такая обработка позволяет «запечатать» первый состав внутри и дает возможность ему восстанавливать структуру защитного слоя зуба даже после окончания процедуры.

Как уже отмечалось выше, процедура глубокого фторирования зубов является безопасной и полностью безболезненной, а также активно применяется в детской стоматологии. Вся процедура не занимает много времени и обычно выполняется в течение 1 часа.

Глубокое фторирование зубов детям

Нехватка фтора в возрасте до 12 лет особенно опасна для зубов ребенка. Именно в этом возрасте молочные зубы сменяются постоянными и в этот период особенно важно, чтобы новые зубы получали достаточно фтора для их нормального развития. Фтор также способствует уменьшению зубного налета путем нейтрализации некоторых вредных бактерий. Применяя процедуру глубокого фторирования зубов в детском возрасте, вы помогаете новым постоянным зубам ребенка развиться правильными и прочными.

Эмаль молочных зубов у детей сильно подвержена риску развития стоматологических заболеваний. На это влияет множество факторов, среди которых и частое употребление в пищу различных сладостей, которые оказывают негативное влияние на зубы.

ОСОБЕННОСТИ ГЛУБОКОГО ФТОРИРОВАНИЯ ЗУБОВ У ДЕТЕЙ:

— Детям, возраст которых составляет меньше 3-х лет, нанесение фторсодержащего препарата, как правило, наносится по-отдельности на каждый обрабатываемый зуб. Детям более старших возрастов процедура проводится по стандартной схеме.
— Из всех способов укрепления зубной эмали наиболее предпочтительным является способ глубокого фторирования зубов. Это особенно важно при проведении процедуры ребенку. Дети не любят посещать стоматолога и их трудно уговорить на поход к стоматологу, тем более несколько раз. Глубокое фторирование выполняется быстро, безболезненно и за одно посещение.
— Для нормального развития постоянных зубов и для профилактики зубных заболеваний у ребенка процедуру глубокого фторирования зубов рекомендуется проводить 2 раза в год.

Показания и противопоказания к фторированию зубов

Процедура глубокого фторирования зубов — это прекрасная профилактика зубных заболеваний. Данная процедура показана всем: как взрослым, так и детям. Рекомендуется проходить её регулярно, как минимум один раз в год. Противопоказаний у процедуры фторирования зубов мало, но они всё же есть. Ниже перечислим основные показания и противопоказания.

Показания к фторированию зубов:

— Повышенная чувствительность зубов, например, возникновение болевых ощущений при принятии горячей или холодной пищи;
— Различные повреждения зубной эмали, царапины, сколы и т.д.;
— Профилактика стоматологических заболеваний;
— Лечение начального кариеса у ребенка;
— После ношения брекетов: для укрепления и восстановления зубной эмали зубов;
— После применения процедур профессиональной чистки зубов.

Среди противопоказаний можно выделить лишь индивидуальную непереносимость фтора и флюороз – избыток фтора в организме. Но как и при любой другой процедуре, назначить лечение должен профессиональный врач-стоматолог на очном приеме.

Глубокое фторирование зубов в Краснодаре

Процедуру глубокого фторирования зубов в Краснодаре Вы можете пройти в нашей клинике современной стоматологии и косметологии «Симметрия». Глубокое фторирование зубов поможет укрепить Вашу зубную эмаль и значительно снизит риск развития различных стоматологических заболеваний таких, как кариес.

В нашей клинике есть всё, что необходимо для проведения глубокого фторирования зубов: опытные врачи и современное стоматологическое оборудование. Сама процедура является довольно доступной, а пользу от неё невозможно переоценить. Записаться на фторирование зубов в Краснодаре Вы можете прямо на нашем сайте. Наше местонахождение и другие контактные данные Вы можете посмотреть в разделе контакты.

Смотрите также

Система домашнего отбеливания зубов – Day White и Night White

Отбеливание зубов Zoom 4 (Зум 4)

Домашнее отбеливание зубов с капами

Чистка зубов Air Flow

Лазерное отбеливание зубов

Отбеливание зубов Opalescence BOOST

Чистка зубов ультразвуком

Гигиена и профилактика

Записаться на прием

Флюороз – что это? Причины и лечение флюороза

Флюороз — это заболевание зубной эмали, связанное с длительным попаданием в организм чрезмерного количества фтора. Оно может носить эндемический и профессиональный характер — развиваться в связи с проживанием в регионе, где питьевая вода содержит много фтора или быть связанным с условиями труда и количеством фтора в воздухе.

Эндемический флюороз распространен в регионах, где в литре питьевой воды количество фтора превышает 1,5 мг. Профессиональная форма заболевания встречается существенно реже, обычно у сотрудников алюминиевой промышленности.

Причины и механизмы развития

Фтор — микроэлемент, который поступает в организм с водой и пищей участвует во многих физиологических процессах. В высокой концентрации он содержится в костной ткани и зубах человека. Поступающий фтор усваивается не полностью, основная доля приходится на фториды, растворенные в воде. Если нехватка микроэлемента увеличивает риск кариозного поражения зубов, то избыток становится причиной болезни.

Наиболее часто наблюдается флюороз у детей при прорезывании постоянных зубов. Это относится к детям, в том числе ранее проживавшим в регионах с высокой концентрацией фтора в воде. Достаточно проживать в таком регионе до 3−4 лет. Избыток фтора влияет и на зачатки постоянных зубов. Молочные зубы при этом болезнью не поражаются, поскольку их зачатки формируются внутриутробно, а избыток фтора задерживается плацентой и не передается малышу.

К развитию флюороза у взрослых концентрация элемента в 1,5 мг на литр воды не приведет. К болезни приводит употребление воды с содержанием 6 мг фтора в литре.

Классификация флюороза

По происхождению различают эндемический и профессиональный флюороз. Несмотря на похожую клиническую картину рекомендации при прохождении курса лечения для этих двух видов болезни будут различаться. При профессиональном заболевании возникает заболевание не только зубов, но и костей — остеопороз, остеосклероз. Заболевания сопровождаются нарушением подвижности суставов.

По мере развития недуга присоединяются вегетососудистые нарушения и патологии печени, возрастает риск онкологического заболевания — остеосаркомы. Стоит отметить, что пятна на зубах при таком флюорозе могут отсутствовать вовсе.

По клиническим проявлениям исследователи выделяют пять форм болезни:

Первые две формы считаются легкой степенью заболевания. Меловидно-крапчатую относят к флюорозу средней степени тяжести. Последние две представляют собой тяжелые формы.

У одного пациента может наблюдаться сразу несколько форм клинических проявлений — на разных зубах и группах зубов формируются различные симптомы. Врачи отмечают, что возникшая форма болезни сохраняется на всю жизнь и не меняется даже при изменениях концентрации микроэлемента в питьевой воде.

Симптомы и проявления

Эндемический флюороз зубов проявляется белыми пятнами или характерными полосами на эмали. По мере развития болезни они приобретают желтый и даже бурый оттенок. Чаще поражаются резцы верхней челюсти, но при высоких концентрациях фтора возникают поражения всех зубов. Наблюдается повышенная стираемость эмали, формируются сколы и эрозии. Симптомы зависят от формы заболевания.

Штриховая

Для этой формы болезни характерно появление белых полос на наружной поверхности резцов. Иногда они выражены, но чаще заметны только при высушивании поверхности эмали. В некоторых случаях возникает слияние полос в крупные пятна, но врач обнаружит отдельные полосы в структуре пятна.

Пятнистая

При этой форме возникают множественные белые пятна, сливающиеся друг с другом. Поверхность пятна блестящая и гладкая, без шероховатостей. Отсутствуют четкие границы пятна – оно плавно переходит в здоровые участки эмали.

Меловидно-крапчатая

При этой форме флюороза эмали появляется матовый оттенок всей поверхности твердых тканей зуба. На поверхности появляются четко очерченные пятна и точки. В ряде случаев эмаль приобретает желтый цвет. Кроме того, на зубах могут наблюдаться участки деструкции: крапинки-углубления диаметром до 1,5 мм и глубиной до 0,2 мм. Дно у таких углублений пигментированное.

Для этой формы характерна повышенная стираемость эмали, при которой возникает обнажение дентина — более глубоких тканей зуба, имеющих темно-коричневый цвет. Чувствительность зубов при обнажении дентина выраженная.

Эрозивная

Эта форма отличается наличием более крупных участков деструкции эмали — эрозий. В области такого углубления эмаль отсутствует вовсе, а на жевательных поверхностях зубов наблюдается повышенная стираемость.

Деструктивная

При деструктивной форме болезни возникает стирание и эрозии не только самой эмали, но и другой твердой ткани зуба — дентина. Зубы становятся хрупкими, возникают крупные сколы, нарушается форма коронок. Организм стремится предотвратить вскрытие полости зуба путем формирования заместительного дентина. Это тяжелая форма болезни, которая может развиваться в регионах, где питьевая вода содержит не менее 10 мг фтора на литр воды.

Диагностика флюороза

Обычно диагностика флюороза не представляет сложности для стоматолога. Пятнистая форма болезни может напоминать так называемое меловое пятно — начальную стадию кариеса или участок деминерализации эмали. Однако в случае с флюорозом такие пятна имеют множественный характер и поражают постоянные зубы после их прорезывания. А начальный кариес развивается единично или на небольшом количестве зубов. Стандартного осмотра врача, как правило, достаточно для постановки точного диагноза.

Одной из особенностей диагностики является рекомендация сдать питьевую воду на анализ, это позволит определить концентрацию в ней фтора. Если будут выявлены повышенные показатели, врач предпишет поменять источник питьевой воды или очищать ее перед употреблением. Если не следовать этой рекомендации, может развиться тяжелая форма болезни, сопровождающаяся разрушением зубов.

Особенности лечения

При флюорозе эмали врач посоветует использовать зубные пасты и ополаскиватели для полости рта без фтора. Эта рекомендация относится ко всем случаям и формам болезни.

Удаление пораженных участков эмали и пломбирование не используются, поскольку вероятность выпадения пломбы и дальнейшего разрушения зуба очень высока. Врач может назначить прием препаратов фосфора и кальция для дополнительного укрепления твердых тканей.

Легкие формы болезни подлежат косметическому исправлению. Могут быть использованы химическое, фотоотбеливание или лазерное отбеливание зубов. После этого обязательно выполняется реминерализирующая терапия: врач нанесет на эмаль препараты на основе соединений фосфора и кальция с помощью электрофореза, ультрафонофореза или аппликацией. Иногда целесообразно использовать каппы со специальным составом внутри — эта процедура может проводиться как дома, так и в условиях стоматологического кабинета. Курс реминерализирующей терапии при этом заболевании состоит из 10−20 процедур в зависимости от степени поражения тканей.

Меловидно-крапчатая, эрозивная и деструктивная формы не позволяют провести эффективное отбеливание. В этом случае помочь достичь косметического эффекта может реставрация зубов — установка люминиров или виниров. В тяжелых случаях лечение флюороза проводится путем восстановления зубов искусственными коронки из металлокерамики или керамики.

Ортопедическое лечение позволяет не только устранить косметический дефект, но и предупредить дальнейшее разрушение зуба, а также справиться с повышенной чувствительностью.

Прогноз и профилактика

Прогноз благоприятен в том случае, если пациент своевременно обратился к врачу и выполняет все предписания. Даже тяжелые формы болезни оставляют возможность для восстановления эстетичности улыбки с помощью современных методов. Но чем раньше вы обратитесь к специалисту, тем меньших усилий потребует лечение флюороза зубов.

Главным направлением профилактики является уменьшение количества фтора, попадающего в организм. При проживании в регионе с высокой концентрацией микроэлемента в питьевой воде важно найти другой источник — потреблять очищенную воду или приобретать привезенную из другого региона. Также следует ограничить употребление фторсодержащих продуктов: морской рыбы, шпината, сливочного масла, морской капусты и др.

Важно отказаться от использования зубных паст, гелей и ополаскивателей с фтором. Обратите внимание, что детские зубные пасты в своем большинстве не содержат фтора и агрессивных абразивных частиц.

Стоматологи клиники «СТОМА» знают, как лечить флюороз любых форм. Мы располагаем широкими возможностями для профессионального отбеливания и качественного восстановления зубов. Записаться на осмотр и консультацию врача вы можете по телефону или через специальную форму на сайте.

Фторирование зубов | Стоматология Бескудниково

Что такое фторирование эмали зубов

Эмаль — самая прочная ткань в организме человека. Ее структурным элементом является гидроксиапатит. Однако, она боится кислых сред, которые становятся причиной эрозии, дисплазии и других неприятных проблем.

Насыщение эмали фтором приводит к образованию гидроксифторапатитов, которые за счет повышенной устойчивости к низким показателям pH помогают поддерживать ее целостность даже в агрессивных условиях.

Также положительное воздействие фтора заключается:

в подавлении активности микроорганизмов ротовой полости и замедлении образования зубного налета,
устранении и предупреждении повышенной чувствительности зубов,
увеличении срока службы пломб,
выравнивании поверхности эмали,
восстановлении цвета зубов — исчезают темные и меловидные пятна.

Внимание! Избыток фтора — тоже плохо. Большое количество фторидов кальция нарушает структуру эмали, делает ее более хрупкой. На поверхности появляется характерная пятнистость, известная в стоматологии, как флюороз. Поэтому фторирование зубов, особенно детям, должно проводиться специалистом в стоматологическом кабинете.

Показания и противопоказания для фторирования

Показания для проведения процедуры:

повышенная чувствительность эмали зубов,
ортодонтическое лечение с использованием брекет-систем,
склонность к развитию кариеса, в том числе множественный кариес на стадии белого пятна,
восстановление и защита после отбеливания зубов,
закрепление результата после реминерализации эмали.

К противопоказаниям относится:

аллергия на составляющие фторирующих средств,
избыток фтора в воде,
эндемическая крапчатость зубного ряда (флюороз).

Виды фторирования

Фторирование может быть:

Простым — к нему прибегают, в основном, для профилактики. Оно заключается в нанесении специального фторирующего лака, который образует на поверхности зуба тонкую защитную пленку и держится до полугода.
Глубоким. Глубокое фторирование зубов актуально при нарушении структуры эмали. Его часто проводят в сочетании с реминерализацией в виде курсового лечения. Оно подразумевает постепенное и более глубокое насыщение твердых тканей необходимыми минералами, в том числе фтором.

Внимание! Как один из вариантов глубокого фторирования можно рассматривать минерализацию эмали с помощью электрофореза. Действие электротоков обеспечивает глубокое проникновение фторгеля, повышая эффективность фторирования в 5 раз.

Ход выполнения процедуры

Процедура состоит из 5 этапов:

Врач очищает эмаль от бактериального налета и зубного камня, то есть проводит профессиональную чистку зубов. Это позволит ионам фтора беспрепятственно проникать в эмаль и значительно повышает эффективность процедуры.
Зубы изолируются от воздействия слюны специальными накладками, эмаль тщательно высушивается.
Стоматолог наносит фторирующий состав, равномерно распределяя его по всей поверхности зубов и оставляет на несколько минут для впитывания.
Остатки геля снимаются тампоном, промывают зубы водой и вновь высушивают поверхность.
Специалист обрабатывает зубы финишным составом с ионами кальция и магния для усиления эффекта.

Существует большой выбор фторирующих препаратов и методик их нанесения. Наши врачи-стоматологи для каждого пациента, в том числе детей, подбирают индивидуальное решение проблемы, ориентируясь на структуру эмали, общее состояние зубов, наличие хронических заболеваний, особенности питания и другие факторы.

Фторирование зубов в Рязани по выгодным ценам

Фторирование зубов – стоматологическая процедура, предусматривающая нанесение на зубную эмаль специальных составов, содержащих фтор. Показаниями к назначению лечебного курса являются недостаток микроэлемента в питьевой воде, склонность к кариесу, повышенная чувствительность зубов из-за тонкого слоя эмали и другие патологии. Фторирование, как дополнительную процедуру, проводят после отбеливания и снятия ортодонтических конструкций.

Причины нарушения защитных функций эмали

Фторирование позволяет восстановить эмалевый слой и его защитные функции. Истончение эмали зубов происходит по многим причинам, но наиболее распространенными являются:

недостаток в организме кальция;
нарушение обмена веществ в организме;

стоматологические инфекции;
изменение химического состава слюны;
нарушение правил гигиены;
врожденные заболевания;
длительная лекарственная терапия.

Истонченная и ослабленная эмаль перестает быть надежным барьером для болезнетворных бактерий, поэтому в ротовой полости создается патогенная микрофлора, разрушающая зубы и провоцирующая заболевания десен.

Методики фторирования

Профессиональное фторирование проводят после курса стоматологического лечения, (устранения кариеса, некариозных патологий) и после профессиональной гигиены полости рта. Эффективность процедуры повысится, если предварительно провести насыщение зубных тканей кальцием. Для проведения сеанса используют несколько методик.

Быстрый сеанс предусматривает изготовление эластичных кап по зубным слепкам. Капы заполняют лечебным составом и надевают на зубы. Время одной процедуры составляет 7–10 минут. Количество процедур определяет врач, но в стандартный курс входит 10 сеансов.

Фторирование с помощью электрофореза проводится в два этапа:

накладка электродов с раствором кальция;
накладка электродов с раствором фторида натрия.

Как и в первом случае, в рамках восстановительного курса назначается 10 сеансов.

Нанесение фтор-лака на зубы – традиционная технология, которая применяется редко по причине появления новых методов фторирования. На зубы наносят пленку с веществом, ускоряющим процесс проникновения фтора в эмалевый слой. Покрытие с лечебной целью осуществляют 2–5 раз в год.

Усиленное фторирование

При использовании методик с поверхностным нанесением лечебных составов фтор проникает неглубоко, образуя нерастворимые соединения. Для глубокого фторирования применяют специальные растворы, состоящие из двух жидких компонентов. В состав вещества входит фтористый силикат магния, молекулы которого способны глубоко проникать внутрь эмалевого слоя. Методика применяется при серьезном дефиците микроэлемента.

Фторирование молочных зубов

Фтор необходим ребенку для нормального развития и роста. Элемент, содержащийся в пище и воде в достаточном количестве, обеспечивает потребности организма. При дефиците вещества зубы начинают разрушаться. В домашних условиях используют специальные пасты, гели, содержащие фтор и компоненты, помогающие его эффективному усвоению.

Молочные зубы должны отслужить свой срок, поэтому важно их сохранить в здоровом состоянии до момента естественного удаления. Профессиональное фторирование является значительно более результативным способом по сравнению с домашними процедурами. К тому же этот метод продлевает срок службы пломб, защищает зубы от кариеса, разрушения эмали и других стоматологических патологий.

Противопоказания

Стоматологическое фторирование зубов не проводят при следующих патологиях:

наличие глубокого кариеса;
избыток фтора в организме, флюороз;

аллергия на леченые составы;
токсикоз у беременных.

Перед принятием решения о фторировании в домашних условиях необходимо пройти консультацию у стоматолога. Избыток вещества наносит не меньший вред организму, чем его дефицит.

Фторирование в клинике «Альфа-стоматология»

Специалисты клиники «Альфа-стоматология» в Рязани назначат специальный курс по укреплению зубной эмали, включая фторирование, если в этом возникнет необходимость. У нас есть самые современные составы для устранения дефицита фтора, которые обладают высокой эффективностью и безопасностью для организма. Процедура показана не только в рамках лечения, но и при комплексном отбеливании зубов. Записывайтесь на прием к стоматологу по контактному телефону либо через онлайн-форму.

Преимущества

Полная безопасность процедуры

Проверенное качество материалов

Квалификация специалистов

Эксперт статьи, которую вы читаете:

Нилова Анна Александровна

Врач-стоматолог, терапевт, гигиенист

Цены

Подробнее о стоимости услуг вы можете узнать на странице «Цены»

Фторирование зубов в Сургуте — цены на фторирование ✅

Чёткий план лечения;
Отсутствие ненужных дополнительных услуг;
Устранение причины патологии.

6 600 ₽

от 5 000 ₽

Цены Фторирование — что это? Цели фторирования Противопоказания Преимущества Чего опасаться

Среди самых распространенных проблем с зубами числятся их хрупкость, чувствительность и кариес. Цифровая стоматология «Югория-Дент+» предлагает широкий перечень услуг по поддержанию здоровья, лечению и протезированию зубного ряда. В ходе борьбы со многими проблемами рекомендуется фторирование. Это безболезненная местная процедура, направленная на насыщение фторидами. Она проводится с целью предупреждения кариеса и профилактики заболеваний ротовой полости.

Безболезненное лечение
Анестезия подбирается индивидуально
Доступная цена
Стоимость услуг ниже на 32% , чем в других клиниках
Гарантия качества
Опыт успешной врачебной практики стоматологов от 12 лет

Цены на фторирование зубов

Фторирование зубов

6 500 ₽

от 5 000 ₽

Фторирование — что это?

Фторирование делают взрослым и детям, ведь красивая и здоровая улыбка всегда важна. Нередко регулярной чистки, полоскания, своевременного посещения стоматолога и использования зубной нити недостаточно. Кальций и фтор — это основа эмали, если их не хватает, провоцируется развитие кариеса, требуется фторирование. Если зуб уже поврежден, может понадобиться лечение поверхностного, срединного или глубокого кариеса со снятием пораженного слоя и пломбированием.

Опасаться процедуры не стоит, поскольку зубы просто покрывают веществом с наличием ионов фтора. Это помогает пополнить запасы элемента, исключить потерю прочности тканей и деминерализацию.

Основные правила фторирования:

обеспечивается контакт поверхности зубов и используемого состава;
важно оставить средство на эмали на нужное время;
нельзя проглатывать препарат;
контакт со слизистой тканью не допускается.

Манипуляция рекомендована в ряде случаев, в том числе до установки брекетов. Для детей до 3 лет процесс включает нанесение на отдельные зубы, после преодоления этого возраста и у взрослых фторирование реализуют по всей ротовой полости. Цифровая стоматология «Югория-Дент+» выполняет все виды фторирования: простое, глубокое, с использованием электрофореза. Учитываются предпочтения пациента, состояние зубного ряда и другие факторы.

Цели фторирования

Процедура проводится для защиты эмали от кислой среды, она формируется за счет микроорганизмов и постепенно ведет к разрушению. До и после процедуры рекомендуется использование зубной пасты без фтора, поскольку чрезмерное содержание может негативно сказаться на зубах и эмали. Проведение фторирования актуально при необходимости борьбы с повышенной чувствительностью, после процесса химического отбеливания и при различных заболеваниях зубов.

Фторирование рекомендовано в следующих случаях:

как профилактика появления различных стоматологических заболеваний, в том числе кариеса;
на этапе перед отбеливанием зубов, до установки систем по исправлению прикуса или другой коррекции;
заметная чувствительность дентина и эмали при наличии реакции на холодную, горячую пищу или жидкость, сладости;
повышенные показатели истираемости верхнего слоя зубных единиц;
деминерализация;
склонность к проявлению кариеса;
устранение кариеса на этапе пятна;
после реставрации и лечения у доктора;
ускорение формирования детской эмали;
гипоплазия наружного слоя зубов;
период беременности, когда падает иммунитет и растет риск развития стоматологических проблем.

При всей пользе процесса выполнять его можно не всегда, поэтому требуется консультация стоматолога.

Когда прибегать к фторированию не стоит?

Специалисты нашей клиники обязательно учтут противопоказания, поскольку наша цель — ваше здоровье, красивая улыбка и качественный сервис. Узнать факторы, делающие процедуру невозможной или нежелательной, следует до ее начала. Фторирование требует профессиональной помощи, а при попытке воздействия в домашних условиях люди часто сталкиваются с неприятными последствиями, в том числе аллергией на фтор и последующей интоксикацией. Значимым противопоказанием является переизбыток фтора, иначе зубы станут малопривлекательными.

Для получения фтора есть несколько источников, но в большей мере он насыщает организм при употреблении питьевой воды. Если пить жидкость с содержанием 1.5 мл фтора на литр, не выполняя ее очищение, прибегать к фторированию категорически запрещается. В условиях нашей страны гораздо чаще сталкиваются с недостатком фтора, такова ситуация примерно у 85 % населения, а в северных регионах фторидов в воде почти не наблюдается. Фторирование запрещено при наличии индивидуальной непереносимости фторсодержащих веществ и диагнозе «сахарный диабет».

Преимущества методики при проведении в условиях стоматологической клиники

Процедура не доставляет никаких ощущений, единственным дискомфортом является необходимость не закрывать рот во время манипуляций доктора.

Болезненности или опасности для организма нет, зато есть масса положительных моментов:

Услуга востребованна, предлагается нашими специалистами. Используются проверенные методики и фторсодержащие составы высокого качества.
Во время и после процесса дискомфорт не появляется. Не растет чувствительность, заметная после осветления эмали.
Повышается уровень прочности эмали, она лучше противостоит постоянному воздействию.
Снижение показателей чувствительности. Этот параметр особенно важен при наличии реакции на различные раздражители.
При предварительной установке пломб фторирование может положительно повлиять на период их службы.
Возможность проведения при обнаружении кариозных поражений на начальных стадиях, обеспечивается эффективная борьба с заболеванием.
Используется как профилактика кариеса и дает хорошие результаты.
Безопасность для всех категорий населения, в том числе это распространяется на малышей. Фтор повышает шансы на сохранение первых зубов. Также нет риска для плода во время вынашивания ребенка, зато зубы получают хорошую защиту.

Предупреждение кариеса имеет огромное значение: это дешевле и проще, чем лечение заболевания. Если есть возможность избежать удаления части зубных тканей, стоит опробовать все возможности.

Есть ли минусы, чего опасаться?

Даже самые простые методики воздействия имеют недочеты.

При планах на фторирование стоит учесть следующее:

ни в коем случае обработка не проводится при флюорозе, иначе значительные осложнения гарантированы;
не стоит приступать к фторированию, если используется фторсодержащая паста;
не проводят покрытие зубов при наличии токсикоза у беременных женщин, стоит подождать, пока состояние улучшится.

На качество лечения влияет не только врач, но и пациент, поскольку ему требуется спокойно посидеть, пока средство подействует, а доктор закончит работу. Также требуется внимательно относиться к рекомендациям специалиста и своевременно выполнять процедуры с учетом назначенного курса.

Глубокий тип фторирования проводится 1—2 раза в течение года, лак наносится каждые 6 месяцев. Методика имеет гораздо больше положительных качеств, чем недочетов, поэтому ее использование целесообразно в большей части случаев. На поздних стадиях поражения зубов покрытие уже не поможет, но оно проводится после лечения дефектов. Проверяться у стоматолога нужно регулярно, в том числе сразу после появления первых зубов у детей, даже при отсутствии боли, видимых дефектов. Стоматолог осмотрит ротовую полость и даст полезные рекомендации.

Запись на консультацию в Цифровую стоматологию «Югория-Дент+»

Для записи на бесплатную консультацию заполните форму. Мы свяжемся с Вами в течение нескольких минут. Вы можете позвонить нам сами по номеру +7 (3462) 22-16-40

Заполняя настоящую форму вы даете свое согласие на обработку своих персональных данных

Расположение

Профилактика кариеса у детей в Ставрополе — Африка

- Визиограф
- Герметизация фиссур
- Компьютерная томография
- Лазерная диагностика
- Профессиональная гигиена
- Профилактика кариеса
- Фторирование зубов
- ICON
- Адаптация детей
- Детская хирургия
- Детям аллергикам
- Закись азота
- Кариес молочных зубов
- Периодонтит у детей
- Пластика уздечки языка и губы
- Пломбирование молочных зубов
- Под микроскопом
- Под наркозом
- Пульпит
- Стоматит
- Травмы зубов и десен
- Удаление молочных зубов
- Брекеты для детей
- Индивидуальные каппы
- Пластинки для зубов
- Трейнеры для детей
- Коронки на молочные зубы
- Реставрация молочных зубов

Очень часто кариес первое время вообще себя не проявляет, не вызывает никаких ощущений. Даже если чадо не высказывает жалобы, за зубками стоит внимательно наблюдать и проходить профилактические осмотры в клинике. Именно профилактика кариеса у детей позволит избежать серьезных последствий: разрушения, потери зуба и развития других заболеваний.

Поэтому родители спрашивают: как проводить профилактику кариеса? Об этом поговорим подробнее. На сегодня существуют несколько разновидностей мероприятий:

Первичные. Их цель устранить условия формирования заболевания, повышение собственного иммунитета.
Вторичные. Диагностика на ранних этапах, недопущение повторного заражения. То есть регулярное посещение доктора (минимум каждые три месяца).

Профилактика кариеса у детей в Ставрополе должна начинаться еще в утробный период, когда закладывается здоровье всех систем и органов. После рождения основой профилактики служит гигиена. У грудничков за ней приглядывают мамы, а по мере взросления крохи нужно приучать следить за ней самостоятельно: постоянная чистка при помощи паст, нитей и т. д.

Профессионалы для профилактики кариеса используют такие методы, как фторирование и реминерализация (нанесение специального раствора, и как следствие — барьер, дополнительный плюс — снижение чувствительности). Применяется и электрофорез (для проникновения фтора в эмаль), герметизация фиссур (запечатывание углублений, в которых чаще всего возникают проблемы), инфильтрация (пятнышко удаляют, размягчая спец. гелем), озон, воздушно-абразивный, лазер (также воздействуют на зараженную ткань).

Специалисты стоматологии «Африка» подберут грамотные способы профилактики кариеса и не допустят распространение болезни.

Это лечат

Борисова Виктория

Детский стоматолог-терапевт

Карибова Алена

Заместитель генерального директора по лечебной части

Клековкина Юлия

Детский стоматолог-терапевт

Рыбалка Виктория

Детский стоматолог-терапевт

Белов Иван

Детский стоматолог-терапевт

Умарова Шахпери

Детский стоматолог-терапевт

Фисунова Ирина

Семейный стоматолог-терапевт

Пылева Елена

Детский стоматолог-терапевт

Дьяченко Полина

Детский стоматолог-терапевт

Воробьёва Оксана

Семейный стоматолог-терапевт

Бежанова Нелли

Детский стоматолог-терапевт

Лихова Марина

Детский стоматолог-терапевт

Ушакова Виктория

Стоматолог-терапевт

Акопян Гоарик

Детский стоматолог-терапевт

Болуров Магомет

Детский стоматолог-терапевт

Чочиева Мадина

Детский стоматолог-терапевт

Фиданян Регина

Взрослый стоматолог-терапевт

Безверхова Евгения

Взрослый стоматолог-терапвет

Применение капиллярного электрофореза для определения примесей в препаратах меченных фтором-18 ПЭТ-радиофармпрепаратов

Сохранить цитату в файл

Формат: Резюме (текст)PubMedPMIDAbstract (текст)CSV

Добавить в коллекции

Создать новую коллекцию
Добавить в существующую коллекцию

Назовите свою коллекцию:

Имя должно содержать менее 100 символов

Выберите коллекцию:

Не удалось загрузить вашу коллекцию из-за ошибки
Повторите попытку

Добавить в мою библиографию

Моя библиография

Не удалось загрузить делегатов из-за ошибки
Повторите попытку

Ваш сохраненный поиск

Название сохраненного поиска:

Условия поиска:

Тестовые условия поиска

Эл. адрес: (изменить)

Который день? Первое воскресеньеПервый понедельникПервый вторникПервая средаПервый четвергПервая пятницаПервая субботаПервый деньПервый рабочий день

Который день? ВоскресеньеПонедельникВторникСредаЧетвергПятницаСуббота

Формат отчета: SummarySummary (text)AbstractAbstract (text)PubMed

Отправить максимум: 1 шт. 5 шт. 10 шт. 20 шт. 50 шт. 100 шт. 200 шт.

Отправить, даже если нет новых результатов

Необязательный текст в электронном письме:

Создайте файл для внешнего программного обеспечения для управления цитированием

Полнотекстовые ссылки

Эльзевир Наука

Полнотекстовые ссылки

. 2019 5 сентября; 173: 68-74.

doi: 10.1016/j.jpba.2019.05.016. Эпаб 2019 7 мая.

Антуганов Дмитрий ¹ , Юлия Антуганова ¹ , Татьяна Зыкова ¹ , Красикова Раиса ²

Принадлежности

¹ Национальный медицинский исследовательский центр им. Алмазова, ПЭТ-центр, ул. Аккуратова, 2, 197341, Санкт-Петербург, Россия.
² Н.П. Бехтеревой Институт мозга человека РАН, Лаборатория радиохимии, 9Ак. Павлова, 197376, Санкт-Петербург, Россия; Санкт-Петербургский государственный университет, Институт химии, Университетская наб. , 13Б, 199034, Санкт-Петербург, Россия. Электронный адрес: [email protected].

PMID: 31121456
DOI: 10.1016/j.jpba.2019.05.016

Дмитрий Антуганов и др. Джей Фарм Биомед Анал. 2019 .

. 2019 5 сентября; 173: 68-74.

doi: 10.1016/j.jpba.2019.05.016. Эпаб 2019 7 мая.

Авторы

Дмитрий Антуганов ¹ , Юлия Антуганова ¹ , Татьяна Зыкова ¹ , Красикова Раиса ²

Принадлежности

¹ Национальный медицинский исследовательский центр им. Алмазова, ПЭТ-центр, ул. Аккуратова, 2, 197341, Санкт-Петербург, Россия.
² Н.П. Бехтеревой Институт мозга человека РАН, Лаборатория радиохимии, ул. Ак. улица Павлова, 197376, Санкт-Петербург, Россия; Санкт-Петербургский государственный университет, Институт химии, Университетская наб., 13Б, 199034, Санкт-Петербург, Россия. Электронный адрес: [email protected].

PMID: 31121456
DOI: 10.1016/j.jpba.2019.05.016

Абстрактный

Радиофармпрепараты, меченные фтором-18, являются наиболее распространенными диагностическими агентами, используемыми в позитронно-эмиссионной томографии (ПЭТ). Несмотря на хорошо зарекомендовавшие себя процедуры контроля качества (КК), внедрение новых синтетических методов требует постоянного развития аналитической методологии. Здесь мы предлагаем капиллярный электрофорез (КЭ) в качестве простого, быстрого и экономичного аналитического метода, позволяющего оценить потенциально токсичные примеси, включая переходные металлы, в приготовленных препаратах. Разработанный метод был применен в рутинных процедурах контроля качества для нескольких клинически значимых радиоактивных индикаторов.

Ключевые слова: капиллярный электрофорез; Позитронно-эмиссионная томография; Контроль качества; Радиофармпрепараты; Одновременное определение.

Цитируется

Нуклеофильный синтез 6-1-[¹⁸ F]ФДОФА. Медь-опосредованное радиофторирование является ответом?
Красикова Р.Н. Красикова РН. Молекулы. 2020 сен 23; 25 (19): 4365. doi: 10,3390/молекулы25194365. Молекулы. 2020. PMID: 32977512 Бесплатная статья ЧВК. Обзор.

Типы публикаций

термины MeSH

вещества

Полнотекстовые ссылки

Эльзевир Наука

Укажите

Формат: ААД АПА МДА НЛМ

Отправить по номеру

Фторсодержащие комплексы.

перейти к основному содержанию

Полная запись
Другие родственные исследования

Бумажная хроматография и электрофорез на бумаге показали, что комплексы фторциркония и гидроксофторциркония легко изменяются. Легко гидролизуемые пентафторцирконаты идентифицировали с помощью слабокислотного хроматографического растворителя. Из-за полной диссоциации. [ЗрФ ₇ ] ^3- в равновесии [ZrF ₆ ] ^2- + F ^— , возникающие в ходе хроматографического эксперимента по разделению ионов, обнаруживаются только [ZrF ₆ ] 2-9060 6 ионы хроматограмма. Катионные комплексы циркония образуются в сильнокислотных хроматографических растворителях.

Авторов:: Кольдиц, Лотар; Фельц, Адальберт

Дата публикации:: 1961-07-01

Исследовательская организация:: Университет Фридриха Шиллера, Йена, Германия; Institut fur Angewandte Radioaktivitat, Deutsche Akademie der Wissenschaften, Лейпциг; и Technische Hochschule fur Chemie, Merseburg, Ger.

Организация-спонсор:: USDOE

Идентификатор ОСТИ:: 4837073

Номер АНБ:: АНБ-16-000176

Тип ресурса:: Журнальная статья

Название журнала:: Zeitschrift fuer Anorganische und Allgemeine Chemie

Дополнительная информация журнала:: Объем журнала: 310; Выпуск журнала: 4-6; Другая информация: ориг. Дата поступления: 31 декабря 1962 г.; Идентификатор журнала: ISSN 0044-2313

Издатель:: Wiley

Страна публикации:: Страна неизвестна/код недоступен

Язык:: немецкий

Тема:: 37 НЕОРГАНИЧЕСКАЯ, ОРГАНИЧЕСКАЯ, ФИЗИЧЕСКАЯ И АНАЛИТИЧЕСКАЯ ХИМИЯ; КИСЛОТЫ; КАТИОНЫ; ХРОМАТОГРАФИЯ; РАЗЛОЖЕНИЕ; ОБНАРУЖЕНИЕ; ЭЛЕКТРОФОРЕЗ; КОМПЛЕКСЫ ФТОРА; ГИДРОЛИЗ; ИОННЫЙ ОБМЕН; БУМАГА; ПРОЦЕССЫ СЕПАРАЦИИ; РАСТВОРИТЕЛИ; КОМПЛЕКСЫ ЦИРКОНИЯ; ФТОРИДЫ ЦИРКОНИЯ

Форматы цитирования

ГНД
АПА
Чикаго
БибТекс

Кольдиц, Лотар, и Фельц, Адальберт. Фторсодержащие комплексы. I. Бумажная хроматография и электрофорез фторцирконатов . Страна неизвестна/Код недоступен: N. p., 1961. Веб. doi: 10.1002/zaac.19613100403.

Копировать в буфер обмена

Кольдиц, Лотар и Фельц, Адальберт. Фторсодержащие комплексы. I. Бумажная хроматография и электрофорез фторцирконатов . Страна неизвестна/код недоступен. https://doi.org/10.1002/zaac.19613100403

Копировать в буфер обмена

Кольдиц, Лотар, и Фельц, Адальберт. 1961. «Фторсодержащие комплексы. I. Бумажная хроматография и электрофорез фторцирконатов». Страна неизвестна/код недоступен. https://doi.org/10.1002/zaac.19613100403.

Копировать в буфер обмена

@статья{osti_4837073, title = {Фторсодержащие комплексы. I. Бумажная хроматография и электрофорез фторцирконатов}, автор = {Кольдиц, Лотар и Фельц, Адальберт}, abstractNote = {Хроматография на бумаге и электрофорез на бумаге показали, что комплексы фторциркония и гидроксофторциркония легко изменяются. Легко гидролизуемые пентафторцирконаты идентифицировали с помощью слабокислотного хроматографического растворителя. Из-за полной диссоциации. [ZrF7]3- в равновесии [ZrF6]2- + F-, возникающем в ходе хроматографического эксперимента по разделению ионов, на хроматограмме обнаруживаются только ионы [ZrF6]2-. Катионные комплексы циркония образуются в сильнокислотных хроматографических растворителях.}, дои = {10.1002/zaac.19613100403}, URL-адрес = {https://www.osti.gov/biblio/4837073}, журнал = {Zeitschrift fuer Anorganische und Allgemeine Chemie}, ISSN = {0044-2313}, номер = 4-6, объем = 310, place = {Страна неизвестна/Код недоступен}, год = {1961}, месяц = {7} }

Копировать в буфер обмена

https://doi. org/10.1002/zaac.19613100403

Найти в Google Scholar

Поиск в WorldCat, чтобы найти библиотеки, в которых может храниться этот журнал Вы должны войти в систему или создать учетную запись, чтобы сохранять документы в своей библиотеке.

Аналогичных записей в сборниках OSTI.GOV:

Похожие записи

Анализ малых ионов методом капиллярного электрофореза

2016

Авторы:

Джатиндер Сингх Аулах ¹ ,

Рамандип Каур ¹ ,

Ашок Кумар Малик ¹

Джатиндер Сингх Аулах ¹ ,

Рамандип Каур ¹ ,

Ашок Кумар Малик ¹

показать подробнее

Серия: Методы молекулярной биологии > Книга: Капиллярный электрофорез

Протокол | DOI: 10. 1007/978-1-4939-6403-1_12

Филиалы:

Кафедра химии Пенджабского университета, Патиала, Пенджаб, Индия

меньше

Доступ разрешен через: Учреждение

PDF Полный текст Статьи по теме

Abstract

Небольшие неорганические ионы легко отделяются с помощью капиллярного электрофореза, поскольку они имеют высокое отношение заряда к массе и мало страдают от некоторых нежелательных явлений, влияющих на частицы с более высокой молекулярной массой, таких как адсорбция на

…подробнее

Небольшие неорганические ионы легко отделяются с помощью капиллярного электрофореза, потому что они имеют высокое отношение заряда к массе и мало страдают от некоторых нежелательных явлений, влияющих на частицы с более высокой молекулярной массой, таких как адсорбция на стенке капилляра, разложение и осаждение. Эта глава посвящена анализу малых ионов, отличных от ионов металлов, с использованием капиллярного электрофореза. Описаны методы определения ионов азота, фосфора, серы, фтора, хлора, брома, йода.

меньше

Рисунки (0) и видео (0)

Ключевые слова

Техника:

Капиллярный электрофорез (КЭ), капиллярный зонный электрофорез (КЗЭ), хроматография, титрование

Другие:

йод, сера, Азот, фосфор, Фтор, Малые ионы, хлор, Бром

Связанные статьи

На основе методов

Ссылки

Fritz JS (2000) Последние разработки в области разделения неорганических и малых органических ионов с помощью капиллярного электрофореза. J Хроматогр А 884: 261–275
Каньянский Д., Масар М., Марак Дж. , Бодор Р. (1999) Капиллярный электрофорез неорганических анионов. J Хроматогр A 834: 133–178
Садецка Дж., Полонски Дж. (1999) Определение неорганических ионов в пищевых продуктах и напитках методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 834: 401–417
Polesello S, Valsecchi SM (1999) Электрохимическое обнаружение в анализе неорганических соединений методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 834: 103–116
Тимербаев А.Р., Дабек-Злотожинскаб Э., Хуп А.Г.Т. (1999) Анализ неорганической среды методом капиллярного электрофореза. Аналитик 124: 811–826
Тимербаев А.Р., Бухбергер В. (1999) Перспективы обнаружения и повышения чувствительности неорганических ионов при капиллярном электрофорезе. J Хроматогр A 834: 117–132
Мартинкова Э., Кржижек Т., Куфаль П. (2014) Определение нитритов и нитратов в питьевой воде с помощью капиллярного электрофореза. Химические документы 68: 1008–1014
Фукуси К., Тада К., Такеда С., Вакида С., Ямане М., Хигаси К., Хииро К. (1999) Одновременное определение ионов нитратов и нитритов в морской воде методом капиллярного зонного электрофореза с использованием искусственной морской воды в качестве раствора-носителя. J Хроматогр A 838: 303–311
Fukushi K, Nakayamaa Y, Tsujimoto J (2003) Высокочувствительный электрофорез капиллярной зоны с искусственной морской водой в качестве фонового электролита и нестационарный изотахофорез как онлайн-процедура концентрации для одновременного определения нитритов и нитратов в морской воде. J Хроматогр А 1005: 197–205
Окемгбо А.А., Хилл Х.Х., Симс В.Ф., Меткалф С.Г. (1999) Электрофоретический анализ капиллярной зоны обратной полярности нитратов и нитритов в пробах природной воды. Анальная химия 71: 2725–2731
Озтекин Н., Нутку М.С., Эрим Ф. Б. (2002) Одновременное определение нитритов и нитратов в мясных продуктах и овощах методом капиллярного электрофореза. Пищевая химия 76: 103–106
Гао Л., Барбер-Сингх Дж., Коттегода С., Виртшафтер Д., Шиппи С.А. (2004) Определение нитратов и нитритов в перфузате головного мозга крыс методом капиллярного электрофореза. Электрофорез 25: 1264–1269.
Будко Д.Ю., Купер Б.Ю., Харви В.Р., Мороз Л.Л. (2002) Микроанализ высокого разрешения нитритов и нитратов в нейронных тканях методом капиллярного электрофореза с определением электропроводности. J Хроматогр B 774:97–104
Chang SY, Tseng WL, Mallipattu S, Chang HT (2005) Определение малых фосфорсодержащих соединений методом капиллярного электрофореза. Таланта 66: 411–421
Stover FS (1999) Капиллярный электрофорез оксоанионов фосфора. J Хроматогр A 834: 243–256
Wang T, Li SFY (1999) Разделение неорганических фосфорсодержащих анионов методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 834: 233–241
Сталикас К.Д., Конидари К.Н. (2001) Аналитические методы определения пестицидов, содержащих фосфоновые и аминокислотные группы. J Хроматогр А 907:1–19
Hooijschuur EWJ, Kientz CE, Brinkman UA (2002) Методы аналитического разделения для определения боевых отравляющих веществ. J Хроматогр А 982: 177–200
Hissner F, Mattusch J, Heinig K (1999) Количественное определение серосодержащих анионов в сложных матрицах с помощью капиллярного электрофореза и определения электропроводности. J Хроматогр А 848: 503–513
Bjergegaard C, Møller P, Sørensen H (1995) Определение тиоцианата, йодида, нитрата и нитрита в биологических образцах с помощью мицеллярной электрокинетической капиллярной хроматографии. J Хроматогр A 717: 409–414
Masselter SM, Zemann AJ, Bonn GK (1996) Определение неорганических анионов в растворах сульфатной варки методом капиллярного электрофореза. J Хроматограмма высокого разрешения 19: 131–136
Романо Дж., Джандик П., Джонс В.Р., Джексон П.П. (1991) Оптимизация неорганического капиллярного электрофореза для анализа анионных растворенных веществ в реальных образцах. J Хроматогр 546: 411–421
Salimi-Moosavi H, Cassidy RM (1995) Капиллярный электрофорез неорганических анионов в неводных средах с электрохимическим и непрямым УФ-детектированием. Анальная химия 67: 1067–1073
Шамси С.А., Даниэльсон Н.Д. (1994)Нафталинсульфонаты как электролиты для капиллярного электрофореза неорганических анионов, органических кислот и поверхностно-активных веществ с непрямым фотометрическим обнаружением. Анальная химия 66: 3757–3764
Ремрев-Бум М.М. (1994) Определение анионов капиллярным электрофорезом и непрямым ультрафиолетовым детектированием. J Хроматогр A 680: 675–684
Motellier S, Gurdale K, Pitsch HJ (1997)Определение состава серы с помощью капиллярного электрофореза с непрямым спектрофотометрическим обнаружением: в поисках подходящего электролита-носителя для максимальной чувствительности. J Хроматогр A 770: 311–319
Бухбергер В., Хаддад П.Р. (1992) Влияние состава электролита-носителя на селективность электрофореза низкомолекулярных анионов в капиллярной зоне. J Хроматогр 608:59–64
Li XA, Zhoub DM, Xua JJ, Chena HY (2008)Определение хлоридов, хлоратов и перхлоратов с помощью электрофореза микрочипов PDMS с непрямым амперометрическим обнаружением. Таланта 75: 157–162
Jones WR, Jandik P (1992) Различные подходы к анализу сложных матриц образцов анионов с использованием капиллярного ионного электрофореза. J Хроматогр 608:385
Wu MJ, Ren HX (1996)Капиллярный электрофорез-непрямое ультрафиолетовое обнаружение анионов различных морфотипов. Чин Дж. Анальная химия 24: 1178–1181
Пирогов А.В., Юрьев А.В., Шпигун О.А. (2003) Использование ионенов в качестве капиллярных модификаторов при одновременном определении азид-, хлорат- и перхлорат-ионов методом капиллярного электрофореза. J Анальная химия 58:781
Wang J (2002) Электрохимическое обнаружение для микромасштабных аналитических систем: обзор. Таланта 56: 223–231
Wang J (2005) Электрохимическое обнаружение микрочипов для капиллярного электрофореза: обзор. Электрофорез 17: 1133–1140.
Guan F, Wu H, Luo W (1996) Чувствительный и селективный метод прямого определения нитритов и нитратов с помощью высокоэффективного капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 719: 427–433
Song L, Ou Q, Yu W, Xu G (1995) Влияние высоких концентраций солей в образцах на капиллярный электрофорез анионов. J Хроматогр A 696: 307–319
Soga T, Inoue Y, Ross G (1995) Анализ галогенидов, оксигалогенидов и оксокислот металлов методом капиллярного электрофореза с подавленным электроосмотическим потоком. J Хроматогр A 718: 421–428
Рантакокко П., Ниссинен Т. , Вартиайнен Т. (1999) Определение ионов брома в сырой и питьевой воде методом капиллярного зонного электрофореза. J Хроматогр А 839: 217–225
Hoop MAG, Cleven RFM, Staden JJV, Neele J (1996) Анализ фторидов в дождевой воде, сравнение капиллярного электрофореза с ионной хроматографией и ионселективной электродной потенциометрией. J Хроматогр А 739: 241–248
Skocir E, Pecavar A, Krasnja A, Prosek M (1993) Количественное определение фтора в зубных пастах. J Хром высокого разрешения 16: 243–246
Шамси С.А., Даниэльсон Н.Д. (1995) Рибонуклеотид для капиллярного электрофореза фосфатов и полифосфанатов с аденозинмонофосфатом и непрямого фотометрического обнаружения. Анальная химия 67: 1845–1852
Wang P, Li SFY, Lee HK (1997) Одновременное определение монофторфосфата и фтора в зубной пасте методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр А 765: 353–359
Heidbuchel EW (1991) Определение фтора в экстрактах зубных паст с фторидом, выбранным на основе кинетики гидролиза монофторфосфата натрия. Фарм Акта Хелв 66: 290–297
Смолл Х., Стивенс Т.С., Бауман В.К. (1975) Новый метод ионообменной хроматографии с использованием кондуктометрического метода. Анальная химия 47: 1801–1809
Haddad RR, Jackson RE (1990) Ионная хроматография — принципы и приложения Elsevier, Amsterdaml 4
Панцова П., Урбанек М., Криваньков Л. (2007) Определение йодида в образцах со сложными матрицами путем разделения капиллярного изотахофореза и зонного электрофореза. Электрофорез 28: 3777–3785
Палиулионите В., Падараускас А. (2002) Однократное капиллярное электрофоретическое определение йодида и йода. Анальный Чим Акта 466: 133–139
Семенова О.П., Тимербаев А.Р., Гагштадтер Р., Бонн Г.К. (1996) Определение ионов хрома методом капиллярного зонного электрофореза. J Хроматогр высокого разрешения 19: 117–119
Carou MIT, Mahia PL, Lorenzo SM, Fernández EF, Rodriguez DP (2001) Прямой анализ неорганических анионов в образцах с высоким содержанием соли методом капиллярного зонного электрофореза. J Chromatogr Sci 39: 397–401
Mori M, Hu W, Haddad PR, Fritz JS, Tanaka K, Tsue H, Tanaka S (2002) Капиллярный электрофорез с использованием фоновых электролитов с высокой ионной силой, содержащих цвиттерионные и неионогенные поверхностно-активные вещества. Анальная биоанальная химия 372: 181–186
Qin W, Lia SFY (2004) Определение ионов аммония и металлов с помощью капиллярного электрофореза – обнаружение градиента потенциала с использованием ионной жидкости в качестве фонового электролита и реагента ковалентного покрытия. J Хроматогр А 1048: 253–256
Guan F, Wu H, Luo Y (1996) Чувствительный и селективный метод прямого определения нитритов и нитратов с помощью высокоэффективного капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 719: 427–433
Himeno S, Inazuma N, Kitano E (2007)Одновременное определение фосфонатов, фосфатов и дифосфатов методом капиллярного электрофореза с использованием внутрикапиллярного комплексообразования с Mo(VI). J Сентябрь Науки 30: 1077–1081
Фукуси К., Ватанабеа К., Такедаб С., Вакидаб С., Ямане М., Хигаси К., Хииро К. (1998) Определение ионов брома в морской воде методом капиллярного зонного электрофореза с использованием разбавленной искусственной морской воды в качестве буферного раствора. J Хроматогр A 802: 211–217
Biesaga M, Kwiatkowska M, Trojanowicz M (1997) Разделение хлорсодержащих анионов с помощью ионной хроматографии и капиллярного электрофореза. J Хроматогр А 777: 375–381

Abstract

…подробнее

меньше

Связанные статьи

На основе методов

Ссылки

Fritz JS (2000) Последние разработки в области разделения неорганических и малых органических ионов с помощью капиллярного электрофореза. J Хроматогр А 884: 261–275
Каньянский Д., Масар М., Марак Дж., Бодор Р. (1999) Капиллярный электрофорез неорганических анионов. J Хроматогр A 834: 133–178
Садецка Дж., Полонски Дж. (1999) Определение неорганических ионов в пищевых продуктах и напитках методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 834: 401–417
Polesello S, Valsecchi SM (1999) Электрохимическое обнаружение в анализе неорганических соединений методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 834: 103–116
Тимербаев А.Р., Дабек-Злотожинскаб Э., Хуп А.Г.Т. (1999) Анализ неорганической среды методом капиллярного электрофореза. Аналитик 124: 811–826
Тимербаев А.Р., Бухбергер В. (1999) Перспективы обнаружения и повышения чувствительности неорганических ионов при капиллярном электрофорезе. J Хроматогр A 834: 117–132
Мартинкова Э., Кржижек Т., Куфаль П. (2014) Определение нитритов и нитратов в питьевой воде с помощью капиллярного электрофореза. Химические документы 68: 1008–1014
Фукуси К., Тада К., Такеда С., Вакида С., Ямане М., Хигаси К., Хииро К. (1999) Одновременное определение ионов нитратов и нитритов в морской воде методом капиллярного зонного электрофореза с использованием искусственной морской воды в качестве раствора-носителя. J Хроматогр A 838: 303–311
Fukushi K, Nakayamaa Y, Tsujimoto J (2003) Высокочувствительный электрофорез капиллярной зоны с искусственной морской водой в качестве фонового электролита и нестационарный изотахофорез как онлайн-процедура концентрации для одновременного определения нитритов и нитратов в морской воде. J Хроматогр А 1005: 197–205
Окемгбо А.А., Хилл Х.Х., Симс В.Ф., Меткалф С.Г. (1999) Электрофоретический анализ капиллярной зоны обратной полярности нитратов и нитритов в пробах природной воды. Анальная химия 71: 2725–2731
Озтекин Н., Нутку М.С., Эрим Ф.Б. (2002) Одновременное определение нитритов и нитратов в мясных продуктах и овощах методом капиллярного электрофореза. Пищевая химия 76: 103–106
Гао Л., Барбер-Сингх Дж., Коттегода С., Виртшафтер Д., Шиппи С.А. (2004) Определение нитратов и нитритов в перфузате головного мозга крыс методом капиллярного электрофореза. Электрофорез 25: 1264–1269.
Будко Д.Ю., Купер Б.Ю., Харви В.Р., Мороз Л.Л. (2002) Микроанализ высокого разрешения нитритов и нитратов в нейронных тканях методом капиллярного электрофореза с определением электропроводности. J Хроматогр B 774:97–104
Chang SY, Tseng WL, Mallipattu S, Chang HT (2005) Определение малых фосфорсодержащих соединений методом капиллярного электрофореза. Таланта 66: 411–421
Stover FS (1999) Капиллярный электрофорез оксоанионов фосфора. J Хроматогр A 834: 243–256
Wang T, Li SFY (1999) Разделение неорганических фосфорсодержащих анионов методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 834: 233–241
Сталикас К.Д., Конидари К.Н. (2001) Аналитические методы определения пестицидов, содержащих фосфоновые и аминокислотные группы. J Хроматогр А 907:1–19
Hooijschuur EWJ, Kientz CE, Brinkman UA (2002) Методы аналитического разделения для определения боевых отравляющих веществ. J Хроматогр А 982: 177–200
Hissner F, Mattusch J, Heinig K (1999) Количественное определение серосодержащих анионов в сложных матрицах с помощью капиллярного электрофореза и определения электропроводности. J Хроматогр А 848: 503–513
Bjergegaard C, Møller P, Sørensen H (1995) Определение тиоцианата, йодида, нитрата и нитрита в биологических образцах с помощью мицеллярной электрокинетической капиллярной хроматографии. J Хроматогр A 717: 409–414
Masselter SM, Zemann AJ, Bonn GK (1996) Определение неорганических анионов в растворах сульфатной варки методом капиллярного электрофореза. J Хроматограмма высокого разрешения 19: 131–136
Романо Дж., Джандик П., Джонс В.Р., Джексон П.П. (1991) Оптимизация неорганического капиллярного электрофореза для анализа анионных растворенных веществ в реальных образцах. J Хроматогр 546: 411–421
Salimi-Moosavi H, Cassidy RM (1995) Капиллярный электрофорез неорганических анионов в неводных средах с электрохимическим и непрямым УФ-детектированием. Анальная химия 67: 1067–1073
Шамси С.А., Даниэльсон Н.Д. (1994)Нафталинсульфонаты как электролиты для капиллярного электрофореза неорганических анионов, органических кислот и поверхностно-активных веществ с непрямым фотометрическим обнаружением. Анальная химия 66: 3757–3764
Ремрев-Бум М. М. (1994) Определение анионов капиллярным электрофорезом и непрямым ультрафиолетовым детектированием. J Хроматогр A 680: 675–684
Motellier S, Gurdale K, Pitsch HJ (1997)Определение состава серы с помощью капиллярного электрофореза с непрямым спектрофотометрическим обнаружением: в поисках подходящего электролита-носителя для максимальной чувствительности. J Хроматогр A 770: 311–319
Бухбергер В., Хаддад П.Р. (1992) Влияние состава электролита-носителя на селективность электрофореза низкомолекулярных анионов в капиллярной зоне. J Хроматогр 608:59–64
Li XA, Zhoub DM, Xua JJ, Chena HY (2008)Определение хлоридов, хлоратов и перхлоратов с помощью электрофореза микрочипов PDMS с непрямым амперометрическим обнаружением. Таланта 75: 157–162
Jones WR, Jandik P (1992) Различные подходы к анализу сложных матриц образцов анионов с использованием капиллярного ионного электрофореза. J Хроматогр 608:385
Wu MJ, Ren HX (1996)Капиллярный электрофорез-непрямое ультрафиолетовое обнаружение анионов различных морфотипов. Чин Дж. Анальная химия 24: 1178–1181
Пирогов А.В., Юрьев А.В., Шпигун О.А. (2003) Использование ионенов в качестве капиллярных модификаторов при одновременном определении азид-, хлорат- и перхлорат-ионов методом капиллярного электрофореза. J Анальная химия 58:781
Wang J (2002) Электрохимическое обнаружение для микромасштабных аналитических систем: обзор. Таланта 56: 223–231
Wang J (2005) Электрохимическое обнаружение микрочипов для капиллярного электрофореза: обзор. Электрофорез 17: 1133–1140.
Guan F, Wu H, Luo W (1996) Чувствительный и селективный метод прямого определения нитритов и нитратов с помощью высокоэффективного капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 719: 427–433
Song L, Ou Q, Yu W, Xu G (1995) Влияние высоких концентраций солей в образцах на капиллярный электрофорез анионов. J Хроматогр A 696: 307–319
Soga T, Inoue Y, Ross G (1995) Анализ галогенидов, оксигалогенидов и оксокислот металлов методом капиллярного электрофореза с подавленным электроосмотическим потоком. J Хроматогр A 718: 421–428
Рантакокко П., Ниссинен Т., Вартиайнен Т. (1999) Определение ионов брома в сырой и питьевой воде методом капиллярного зонного электрофореза. J Хроматогр А 839: 217–225
Hoop MAG, Cleven RFM, Staden JJV, Neele J (1996) Анализ фторидов в дождевой воде, сравнение капиллярного электрофореза с ионной хроматографией и ионселективной электродной потенциометрией. J Хроматогр А 739: 241–248
Skocir E, Pecavar A, Krasnja A, Prosek M (1993) Количественное определение фтора в зубных пастах. J Хром высокого разрешения 16: 243–246
Шамси С.А., Даниэльсон Н.Д. (1995) Рибонуклеотид для капиллярного электрофореза фосфатов и полифосфанатов с аденозинмонофосфатом и непрямого фотометрического обнаружения. Анальная химия 67: 1845–1852
Wang P, Li SFY, Lee HK (1997) Одновременное определение монофторфосфата и фтора в зубной пасте методом капиллярного электрофореза. J Хроматогр А 765: 353–359
Heidbuchel EW (1991) Определение фтора в экстрактах зубных паст с фторидом, выбранным на основе кинетики гидролиза монофторфосфата натрия. Фарм Акта Хелв 66: 290–297
Смолл Х., Стивенс Т.С., Бауман В.К. (1975) Новый метод ионообменной хроматографии с использованием кондуктометрического метода. Анальная химия 47: 1801–1809
Haddad RR, Jackson RE (1990) Ионная хроматография — принципы и приложения Elsevier, Amsterdaml 4
Панцова П., Урбанек М., Криваньков Л. (2007) Определение йодида в образцах со сложными матрицами путем разделения капиллярного изотахофореза и зонного электрофореза. Электрофорез 28: 3777–3785
Палиулионите В. , Падараускас А. (2002) Однократное капиллярное электрофоретическое определение йодида и йода. Анальный Чим Акта 466: 133–139
Семенова О.П., Тимербаев А.Р., Гагштадтер Р., Бонн Г.К. (1996) Определение ионов хрома методом капиллярного зонного электрофореза. J Хроматогр высокого разрешения 19: 117–119
Carou MIT, Mahia PL, Lorenzo SM, Fernández EF, Rodriguez DP (2001) Прямой анализ неорганических анионов в образцах с высоким содержанием соли методом капиллярного зонного электрофореза. J Chromatogr Sci 39: 397–401
Mori M, Hu W, Haddad PR, Fritz JS, Tanaka K, Tsue H, Tanaka S (2002) Капиллярный электрофорез с использованием фоновых электролитов с высокой ионной силой, содержащих цвиттерионные и неионогенные поверхностно-активные вещества. Анальная биоанальная химия 372: 181–186
Qin W, Lia SFY (2004) Определение ионов аммония и металлов с помощью капиллярного электрофореза – обнаружение градиента потенциала с использованием ионной жидкости в качестве фонового электролита и реагента ковалентного покрытия. J Хроматогр А 1048: 253–256
Guan F, Wu H, Luo Y (1996) Чувствительный и селективный метод прямого определения нитритов и нитратов с помощью высокоэффективного капиллярного электрофореза. J Хроматогр A 719: 427–433
Himeno S, Inazuma N, Kitano E (2007)Одновременное определение фосфонатов, фосфатов и дифосфатов методом капиллярного электрофореза с использованием внутрикапиллярного комплексообразования с Mo(VI). J Сентябрь Науки 30: 1077–1081
Фукуси К., Ватанабеа К., Такедаб С., Вакидаб С., Ямане М., Хигаси К., Хииро К. (1998) Определение ионов брома в морской воде методом капиллярного зонного электрофореза с использованием разбавленной искусственной морской воды в качестве буферного раствора. J Хроматогр A 802: 211–217
Biesaga M, Kwiatkowska M, Trojanowicz M (1997) Разделение хлорсодержащих анионов с помощью ионной хроматографии и капиллярного электрофореза. J Хроматогр А 777: 375–381

Рисунки (0) и видео (0)

Ключевые слова

Техника:

Капиллярный электрофорез (КЭ), капиллярный зонный электрофорез (КЗЭ), хроматография, титрование

Другие:

йод, сера, Азот, фосфор, Фтор, Малые ионы, хлор, Бром

Решения для характеристики белков: Электрофорез

Доступны новые специальные предложения!

Бесплатный образец WB-ECL

другие предложения

5101520253035404550 на странице

AdvanStain Скарлет

Флуоресцентный белковый краситель для гелей и блотов

Sensitive – обнаруживает менее нанограмма белка на пятно
Удобный – простой 3-часовой протокол
Эластичный – окрашивающие гели или мембраны
Обратимый – предназначен для последующей вестерн-блоттинга или масс-спектрометрии
Без пятен — чистый фон для получения более качественных данных
Safe – биоразлагаемый, не содержит тяжелых металлов, что повышает безопасность и упрощает утилизацию
Совместимость – изображение с любой лазерной или ПЗС-системой формирования изображения. Совместимые длины волн возбуждения включают зеленый (543, 532 нм), синий (488 нм), фиолетовый (405 нм) и ультрафиолетовый (302, 365 нм). Максимальная длина волны излучения 610 нм

Включает: Концентрат красителя AdvanStain Scarlet
Порошок А для приготовления Fix Solution
Порошок B для приготовления Stain Buffer

Набор для подготовки проб Afyon SDS-PAGE

Набор для быстрого и простого концентрирования и очистки образцов для SDS-PAGE

Purify — удаление загрязнений, которые могут мешать электрофорезу (GuHCl, мочевина, сульфат аммония и т. д.)
Quick — образцы белка готовы к загрузке менее чем за 10 минут
Безопасный — и нетоксичный — ДМСО не требуется
Совместимость с SDS-PAGE и последующим вестерн-блоттингом
Во много раз быстрее, чем концентрирование и замена буфера с помощью ультрафильтрации или диализа

Буферы для загрузки образцов белка

Предварительно смешанные стандартные загрузочные буферы Лэммли для электрофореза белков

Предварительно смешанный — просто добавьте равный объем к образцу белка (поставляется в количестве 2х)
Получите воспроизводимых результатов со стандартизированными буферами
Выберите из уменьшающих или не уменьшающих загрузочных буферов

Буферные пакеты Avant

Удобное, чистое и быстрое приготовление буфера

Качество – буферы для молекулярной биологии высшей чистоты
Удобный – предварительно отмеренный порошок в запечатанных пакетиках
Fast – растворить и сразу использовать
Стандартизированный – гарантированно воспроизводимые результаты для ваших гелей для электрофореза и вестерн-блоттинга

Визио

S Обильный буфер и белковый краситель в одном флаконе

Мгновенные результаты – видим белковые полосы сразу по ходу электрофореза
Чувствительный – обнаруживает от 10 до 25 нг на полосу
Быстрый протокол — ничем не отличается от стандартных протоколов электрофореза — замените используемый краситель на краситель Visio, а образцы помечены и готовы к загрузке после нагревания в течение 10 минут
Гибкий – используйте с восстанавливающими и невосстанавливающими гелями
Совместимость – может использоваться с последующей масс-спектрометрией

Промокательные губки

Губчатые прокладки для переноса для более воспроизводимых переносов вестерн-блотов

Сопротивление сжатию — поддержание надлежащего давления в переносных бутербродах без добавления дополнительной промокательной бумаги
Сохранение толщины — можно использовать повторно в нескольких экспериментах
Удобный — два размера (8 x 11 см и 9 x 15 см), совместимые с различными устройствами для переноса
Стандартизированный — единая плоская конструкция обеспечивает воспроизводимые и стабильные переносы
Четыре подушечки в упаковке — полный набор для обычного аппарата переноса

Буфер передачи FLASHBlot

Готовый к использованию влажный буфер для переноса
Разработан для более быстрого и эффективного переноса влажного белка с повышенной чувствительностью

FLASHBlot — это не обычный влажный переносной буфер.

Быстрее, чем традиционные влажные буферы: лучшие результаты за 20 минут
Более чувствительное обнаружение белков с низким содержанием
Лучшее обнаружение посттрансляционно модифицированных белков
Улучшенный перенос ВСЕХ белков, включая высокомолекулярные белки
Удобно подходит для любой конфигурации влажного переноса

« Мы были приятно удивлены, увидев, что с помощью FLASHBlot мы наблюдали те же уровни переноса через 25 минут, что и при более длительном протоколе переноса… в том числе для белка массой 300 кДа. Этот реагент значительно сократит время наших экспериментов. ” — Доцент, UCSF

Буфер передачи FLASHBlot-SD

Быстродействующий высокоэффективный полусухой буфер для переноса

Fast — состав с высокой ионной силой обеспечивает перенос белка за 3–10 минут при использовании с совместимой полусухой системой с высоким током
Совместимость — используйте существующее сильноточное полусухое устройство переноса
Воспроизводимый – последовательный перенос по всему пятну
Versatile – используйте мембраны из нитроцеллюлозы или ПВДФ для получения переносов с низким фоном и высокой чувствительностью как при хемилюминесцентном, так и при флуоресцентном вестерн-блоттинге

Мембраны для переноса

Удобные мембраны из нитроцеллюлозы и ПВДФ для вестерн-блоттинга

Performance – контроль качества для бесфоновых вестерн-блотов
Удобство – мембраны доступны предварительно нарезанными и в виде рулонов
Высокое отношение сигнал/шум – низкий фоновый сигнал для более четких результатов
Гибкость – выберите подходящую мембрану для вашего вестерн-блоттинга

Опции мембраны:

WesternBright PVDF-FL: флуоресцентное обнаружение
WesternBright PVDF-CL: хемилюминесцентное обнаружение; наилучшая стабильность для снятия и повторного зондирования хемилюминесцентных блотов
ПВДФ-мембраны доступны в виде рулонов или предварительно нарезанных (7×9 см, 10×15 см или 13×18 см)

WesternBright Северная Каролина: универсальная нитроцеллюлозная мембрана
Нитроцеллюлозные мембраны доступны в виде рулонов или предварительно нарезанных (8×10 см)

5101520253035404550 на странице

Использование ингибиторов каспаз в гель-электрофорезе в пульсирующем поле может улучшить оценку радиационно-индуцированной репарации ДНК и апоптоза | Радиационная онкология

Методология
Открытый доступ
Опубликовано: 15 января 2011 г.

Josep Balart ^1,5,
Gemma Pueyo ¹,
LARA I DE LLOBET ¹,
Marta Baro ¹,
Ориол Казановас ¹ ,
Рикард Месия ⁴ и
…
Габриэль Капелла ¹

Радиационная онкология том 6 , номер статьи: 6 (2011) Процитировать эту статью

5570 доступов
Детали показателей

Аннотация

Исходная информация

Индуцированную облучением репарацию двухцепочечных разрывов ДНК (DSB) можно проверить с помощью гель-электрофореза в пульсирующем поле (PFGE) в клетках, инкапсулированных в агарозу. Однако в предыдущих исследованиях сообщалось, что этот анализ нарушается из-за спонтанного разрыва ДНК в этой среде. Мы исследовали механизмы этой фрагментации с основной целью ее устранения, чтобы улучшить оценку радиационно-индуцированной репарации ДНК.

Методы

Образцы культур раковых клеток или ксенотрансплантированных опухолей инкапсулировали в агарозные пробки. Затем клеточные пробки облучали, инкубировали для восстановления и оценивали с помощью PFGE, каспазы-3 и активации гистона h3AX (γh3AX). Кроме того, ингибирование апоптоза оценивали с помощью химических ингибиторов каспазы.

Результаты

Мы подтвердили, что спонтанная фрагментация ДНК была связана с процессом инкапсуляции, независимо от того, были ли клетки облучены или нет. Эта фрагментация ДНК также коррелировала с активацией апоптоза во фракции клеток, инкапсулированных в агарозе, в то время как неапоптотическая клеточная фракция могла воссоединяться с фрагментами ДНК, как было измерено по снижению γh3AX и данным PFGE. Мы смогли устранить вмешательство в апоптоз, применяя специфические ингибиторы каспаз, и улучшить оценку репарации ДНК и самого апоптоза.

Выводы

Оценка радиационно-индуцированной репарации ДНК с помощью PFGE может быть улучшена за счет использования ингибиторов апоптоза. Возможность одновременного определения репарации ДНК и апоптоза, которые участвуют в клеточной судьбе, дает новые идеи для использования методологии PFGE в качестве функционального анализа.

История вопроса

Использование гель-электрофореза в импульсном поле (PFGE) широко распространено при оценке фрагментации ДНК, вызванной двухцепочечными разрывами (DSB) после ионизирующего облучения [1–4]. ДНК-DSB могут приводить к образованию небольших (часто ацентрических) хромосомных фрагментов. После этого начального повреждения клетки активируют механизмы репарации ДНК, чтобы предотвратить катастрофический митоз и гибель клеток из-за потери ацентрических фрагментов ДНК [5]. Принцип методики PFGE заключается в том, что выход ДНК из клеток адекватно коррелирует с интенсивностью фрагментации ДНК [6]. Оценка репарации ДНК с помощью PFGE основана на уменьшении количества ДНК, высвобождаемой из клеток, по мере увеличения длины фрагментов ДНК в процессе воссоединения. Таким образом, снижение доли экстрагированной из клеток ДНК с течением времени можно использовать в качестве оценки репарации ДНК [7].

В методе PFGE клетки инкапсулируют в агарозу, чтобы сформировать клеточные пробки, таким образом предотвращая физическое повреждение клеток и облегчая манипуляции с ними и помещение их в агарозные гели, где будет проводиться электрофорез. Обычно в лабораторных условиях клетки инкапсулируют после периода восстановления, который может происходить в физиологических условиях, таких как клеточные культуры или ксенотрансплантаты. Таким образом, коэффициенты экстракции зависят исключительно от индуцированных и репарированных повреждений ДНК. В то время как желательной стратегией является инкапсуляция клеток после завершения периода репарации, в клинических условиях, где доступность клеток ограничена небольшим размером биоптата опухоли, крайне важно сконцентрировать клетки в агарозных пробках — чтобы получить достаточное количество клеток. номер клетки для анализа PFGE — до облучения [8]. Однако эта тактика означает, что разрыв и восстановление ДНК происходит в нефизиологической среде. Уитакер и Макмиллан сообщили в 1992, инкапсулирование клеток перед облучением ухудшает оценку репарации ДНК из-за вмешательства спонтанной фрагментации ДНК [8]. Это новаторское наблюдение было подтверждено другими исследованиями [9], что привело к убеждению, что результаты таких исследований (условия) недостаточно надежны для правильной оценки репарации ДНК. Тем не менее, основные механизмы, влияющие на клетки, встроенные в агарозу, во время репарации ДНК в методологии PFGE, до сих пор недостаточно изучены.

Чтобы лучше понять спонтанный разрыв ДНК — независимо от того, были ли клетки облучены или нет — в то время как клетки инкапсулированы, мы решили изучить результаты PFGE в клеточных пробках в течение периода инкубации. Наши основные выводы заключались в том, что 1) инкубация клеток, инкапсулированных в агарозу, вызывает фрагментацию ДНК, 2) спонтанный разрыв ДНК вызывается апоптозом (который может быть ингибирован ингибиторами каспаз) и 3) уменьшение влияния спонтанного разрыва улучшает нашу способность оценивать репарация ДНК и определение интенсивности апоптоза.

Методы

Клеточные линии и ксенотрансплантаты опухолей

Опухолевые клетки, использованные в этом исследовании, представляли собой клетки плоскоклеточной карциномы человека A431 из Американской коллекции типов клеток (LGC Promochem, Барселона, Испания) и клеточную линию карциномы поджелудочной железы человека NP18. Клеточная линия NP18 была воспроизведена в нашей лаборатории в виде клеточной культуры и ксенотрансплантатов голым мышам [10, 11]. Самцы бестимусных мышей Swiss nu/nu в возрасте от шести до восьми недель (Harlan, Gannat, France) были размещены в наших помещениях (Ассоциация по оценке и аккредитации по уходу за лабораторными животными, номер аккредитации 1155). Опухоли генерировали путем подкожной инъекции одного миллиона клеток NP18 в бок каждой мыши. Все экспериментальные процедуры были одобрены в соответствии с нашими собственными руководящими принципами по уходу за животными и этике. При достижении опухолями размеров 10 мм их вырезали, измельчали и инкубировали в течение 90 мин в среде Игла, модифицированной Дубелько (DMEM) (pH 7,4), содержащей коллагеназу типа IV (Sigma Aldrich Chemical, Сент-Луис, Миссури, США) и проназу E (Sigma). Затем клеточные суспензии инкубировали в течение 30 мин в трипсине (BioWhittaker, Вервье, Бельгия) при 37°С при легком перемешивании. Наконец, клеточные суспензии пропускали через нейлоновый клеточный фильтр с размером ячеек 70 мкм (BD Falcon, Бедфорд, Массачусетс, США).

Анализ двухцепочечных разрывов ДНК для оценки воссоединения с использованием PFGE

Осадки клеток, полученные после сбора монослоя или обработки солидных опухолей, смешивали с 1% агарозой типа VII (Sigma). Однородные аликвоты помещали пипеткой в формы для пробок объемом 80 мкл (Bio-Rad, Hercules, CA, США) для формирования пробок клеток, доводя количество клеток в пробке до 100000 клеток. Поскольку объем пеллет из опухолей был несколько меньше, чем пеллет из клеточной культуры, мы решили формировать клеточные пробки, используя весь осадок, полученный после дезагрегации опухоли. Клеточные пробки охлаждали при 4°C в течение 20 минут, переносили в пробирки объемом 500 мкл, заполненные DMEM, помещали на лед и облучали мощностью дозы 2,7 Гр/мин (рентгеновское излучение 6 МВ) до 45 Гр, общий уровень дозы в методологии PFGE [12–14]. После облучения среду заменяли на предварительно инкубированную среду при 37°C в среде с 5% CO 9 .0230 2 инкубатор. Репарацию ДНК останавливали, помещая клетки-пробки на лед через 0, 0,5, 1, 2 или 4 ч после облучения. Имитация необлученных клеток-вставок проводилась параллельно с облученными клетками-вставками.

Перед электрофорезом клеточные пробы переносили в охлажденный льдом буфер для лизиса (рН 7,4), содержащий 2% лауроилсаркозина натрия (Fluka Chemie, Buchs, Швейцария) и 0,5 мг/мл протеиназы-К (Sigma) в 0,5 М этилендиаминтетрауксусная кислота (ЭДТА) (Sigma). Лизис проводили на льду в течение 1 ч, а затем при 37°С в течение 24 ч. На этом этапе из-за хрупкости агарозных пробок углы легко ломались. Поэтому, чтобы обеспечить загрузку в гель одинакового количества клеток (ДНК) на дорожку, мы вырезали срез лучше сохранившейся центральной области. Мы создали специальное устройство для резки пробки, чтобы получить срез размером ровно 40 мкл. Гели готовили из 1% легкоплавкой агарозы типа IX (Sigma) в 0,5×трис-борат-ЭДТА-буфере (ТВЕ) (Sigma), pH 8,4. Фрагменты ДНК разделяли с помощью PFGE (CHEF-DR-III, Bio-Rad). Напряженность электрического поля составляла 1,6 В/см при импульсе переключения 3600 с и угле переориентации поля 115° [6]. PFGE проводили в буфере 0,5 × TBE, охлажденном до 14°C, при общем времени работы 96 ч. Хромосомы дрожжей Saccharomyces cervisiae и Schizosaccharomyces pombe использовали в качестве маркеров размера ДНК (Bio-Rad). Гели окрашивали в течение ночи 0,5 мкг/мл бромистого этидия, промывали и просвечивали при 302 нм. Интенсивность флуоресценции ДНК была получена и преобразована в произвольные единицы оптической плотности с использованием системы анализа цифровых изображений (GelDoc 2000 и программное обеспечение Quantity One, Bio-Rad). Сумма флуоресценции в мазках ДНК использовалась для расчетов и оценки различий между экспериментами.

Определение h3AX и активированной каспазы-3 с помощью иммунофлуоресценции

Криостатные срезы (толщиной 3 мкм) клеточных проб, погруженных в ОСТ-компаунд Optimal Cutting Temperature (Sakura Finetek Europe, Alphen aan Den Rijn, Нидерланды), использовали для определяют фосфорилирование гистона h3AX (γh3AX) или активацию апоптоза путем расщепления каспазы-3 [15, 16]. Образцы фиксировали 4% формальдегидом в нейтральном буфере, промывали (0,1% тритон в PBS в течение 10 мин) и инкубировали в течение 1 часа с раствором, блокирующим белок. Далее предметные стекла инкубировали с первичными антителами против фосфогистона h3AX (ser139) (Millipore-Upstate, Биллерика, Массачусетс, США) или расщепленной каспазы-3 (Asp175) (Cell Signaling Technology, Дэнверс, Массачусетс, США) с последующей инкубацией со вторичными антителами, конъюгированными с Alexa Fluor 488 и Alexa Fluor 594, конъюгированными (Invitrogen , Карлсбад, Калифорния, США), соответственно, все в разведении 1:500 в течение 1 ч при комнатной температуре. Флуоресцентные изображения были получены с помощью визуализирующего эпифлуоресцентного микроскопа Zeiss Axioplan 2, оснащенного камерой устройства с зарядовой связью и передовым программным обеспечением SPOT (Diagnostic Instruments Inc, Стерлинг-Хайтс, Мичиган, США). Анализировали от пяти до десяти случайно выбранных изображений полевой микроскопии на предметное стекло. Клетки подсчитывали с использованием программы ImageJ, общедоступного программного обеспечения для обработки изображений Java (http://rsb.info.nih.gov/ij/).

Активацию апоптоза в клетках, растущих в монослое, исследовали с помощью иммунофлуоресценции с использованием специфического ядерного красителя TO-PRO-3 (Invitrogen), расщепленной каспазы-3 (Asp175) и антител, конъюгированных с Alexa Fluor 488.

Ингибиторы каспазы

Для подавления апоптоза клеточные пробки обрабатывали ингибитором панкаспазы, галометилкетоном z-vad-fmk (Bachem, Bubendorf, Швейцария). Клетки, полученные из ксенотрансплантатов, вместо субстанции z-vad-fmk обрабатывали ингибитором каспазы-3 zvd-fmk (Bachem). Оба вещества инкубировали в течение 1 ч до инкапсуляции клеток и во время инкубации в концентрациях 10 мкМ и 100 мкМ соответственно.

Статистика

Результаты выражены как среднее значение ± стандартная ошибка (SE). Статистически значимые различия в сравнении между группами определялись с использованием двустороннего уровня значимости P <0,05. Для анализа данных использовался Статистический пакет для социальных наук, версия 13.0 (IBM, Мадрид, Испания).

Результаты

Независимо от того, были ли клетки облучены или нет, мы обнаружили, что картина мазков ДНК состояла из зоны сжатия (CZ) сразу под лунками, которая была более выражена в облученных клетках, за которой следовала область распределения ДНК. фрагменты, заканчивающиеся внезапным краем (рис. 1). Настройки GelDoc для получения флуоресценции были скорректированы (время экспозиции и апертура диафрагмы) в каждом геле для получения мазков ниже уровней насыщения, но достаточно высоких для измерения. Таким образом, диапазон флуоресценции может варьироваться в зависимости от того, содержит ли гель необлученные или облученные клеточные пробки. В необлученных клетках-пробках мы наблюдали начальное низкое извлечение ДНК, которое со временем постепенно увеличивалось. В клеточной линии A431 эта спонтанная фрагментация ДНК значительно увеличивалась в течение времени инкубации (рис. 1), и аналогичные цифры наблюдались в клеточной линии NP18 (данные не показаны). Напротив, в облученных клетках-вставках начальная экстракция ДНК была выше, чем в необлученных клетках-вставках, что указывает на то, что радиационно-индуцированный разрыв ДНК произошел способом, поддающимся количественной оценке с помощью PFGE. Более того, в этой облученной пробке мы обнаружили зависящее от времени уменьшение фрагментации ДНК, совместимое с процессом воссоединения (рис. 1). Хотя некоторое воссоединение могло иметь место в этих экспериментальных условиях, правильной оценке репарации ДНК явно мешала спонтанная фрагментация ДНК, логично происходящая как в необлученных, так и в облученных клеточных пробках.

Рисунок 1

Шаблон PFGE . (A) PFGE для типичного эксперимента с клеточной линией A431 с клетками, инкапсулированными в агарозу. Показан диапазон количественного определения ДНК, начинающийся непосредственно перед зоной компрессии (CZ) и заканчивающийся на дне мазков. (B) Количество высвобожденной ДНК (оптическая плотность, произвольные единицы, AU) наносили на график как функцию времени с использованием следующих моментов времени: 0, 0,5, 1, 2 или 4 часа. U означает необлученные (черные столбцы) и I — облученные 45 Гр клетки-пробки (белые столбцы). Данные были получены из одного эксперимента.

Изображение полного размера

Учитывая, что агароза не является физиологической средой, мы предположили, что спонтанная деградация ДНК, наблюдаемая в PFGE, может быть следствием апоптоза, запускаемого агарозой, связанного с потерей нормальных взаимодействий клетки с матриксом. Чтобы оценить эту возможность, мы исследовали активацию апоптоза в клетках, погруженных в агарозу. Таким образом, мы решили определить уровни расщепленной каспазы-3, эффектора апоптоза, в клеточных пробках (рис. 2А). Расщепленная каспаза-3 постепенно активировалась независимо от того, были ли клетки облучены или нет, что свидетельствует о том, что апоптоз был вызван агарозной средой (рис. 2В). Для дальнейшего подтверждения того, что источником апоптоза была инкапсуляция в агарозе, мы исследовали активацию каспазы-3 в клетках, растущих в виде монослоя (в физиологических условиях). Мы наблюдали только минимальную активацию апоптоза после 45 Гр (из 174 оцененных клеток 6 были положительными по каспазам после 4 часов инкубации: 3,44% клеточной популяции), что также исключает существенное радиационно-индуцированное происхождение апоптоза и подтверждает участие агарозы в спонтанной фрагментации ДНК (рис. 3). Чтобы изучить, могут ли апоптоз и репарация сосуществовать, мы одновременно определили активацию каспазы-3 и гистона γh3AX методом двойного окрашивания. Сразу после облучения мы наблюдали высокие уровни индукции γh3AX и низкие уровни расщепленной каспазы-3 (рис. 2А). Однако в течение времени инкубации мы обнаружили, что фракция апоптотических клеток была видна одновременно с соответствующей фракцией клеток, в которых присутствовал γh3AX (рис. 2А). Поскольку мы смогли исключить каспазо-положительные клетки из измерений флуоресценции γh3AX, мы могли конкретно определить эволюцию ДНК-DSB. Мы обнаружили, что первоначальная радиационно-индуцированная флуоресценция γh3AX значительно уменьшилась в течение времени инкубации, предполагая, что в тех клетках, в которых апоптоз не был запущен, радиационно-индуцированное повреждение могло быть восстановлено (рис. 2C). Интересно, что в то время как интенсивность γh3AX снижалась в облученных клетках, уровни γh3AX в необлученных клетках не менялись, что указывает на то, что агароза существенно не влияла на уровни γh3AX в этих клетках (рис. 2C). 9Рисунок 2 (A) Клетки-пробки NP18 облучали дозой 45 Гр и инкубировали, чтобы обеспечить восстановление в течение 0, 1, 2 или 4 часов. Иллюстративные изображения ядер, окрашенных DAPI (синий), флуоресценции клеток, активированных каспазой (красный), и флуоресценции γh3AX (зеленый) показаны при времени инкубации 0 и 4 часа. Области интереса (ROI) изображены (исходное увеличение, × 1000). (B) Клетки-пробки NP18 были облучены (белые столбцы) или нет (черные столбцы), и был определен аноикис (% клеток, показывающих активированную каспазу в 100 клетках, подсчитанных на момент времени). (C) В тех же клетках, что и на панели B, флуоресценция γh3X (в пределах DAPI-ROI в 150 ядрах, подсчитанных за момент времени) была измерена в каспаз-отрицательных клетках. Данные были получены из 2 независимых экспериментов. P -значения рассчитаны с использованием критерия Манна-Уитни.

Изображение в полный размер

Рис. 3

Апоптоз в облученных клетках, растущих в виде монослоя, был незначительным . Клетки NP18, растущие на покровном стекле, облучали дозой 45 Гр и инкубировали в течение 4 часов. Показаны пять микроскопических изображений (исходное увеличение, × 1000): ядра, окрашенные TO-PRO-3 (красный), флуоресценция клеток, активированных каспазой-3 (зеленый), и объединенные изображения. В отличие от рисунка 2B, апоптоз был незначительным. Несмотря на облучение, типичная ядерная фрагментация и конденсация хроматина, связанные с апоптозом, были минимальными, но соответствовали специфической активации каспазы-3.

Изображение в натуральную величину

Для дальнейшего подтверждения того, что спонтанная фрагментация ДНК, наблюдаемая в экспериментах с PGFE, была вызвана апоптозом, мы обработали клетки-пробки ингибитором панкаспазы z-vad-fmk. Во-первых, мы подтвердили, что простой инкубации клеточных пробок было достаточно, чтобы вызвать фрагментацию ДНК в зависимости от времени (рис. 4). Затем мы обнаружили, что обработка этих клеточных пробок антиапоптотическим агентом ингибировала прогрессирующую спонтанную деградацию ДНК, подтверждая решающую роль апоптоза и подтверждая механистическое объяснение активации каспазы-3, которое мы продемонстрировали методом иммунофлуоресценции в клеточных пробках (рис. 4).

Рисунок 4

Ингибиторы каспаз блокировали апоптоз, вызванный инкапсуляцией в агарозу . Изображены репрезентативные PFGE из клеточных линий A431 и NP18. Спонтанная фрагментация ДНК, вызванная исключительно инкубацией в необлученных клеточных пробках (черные столбцы), ингибировалась (серые столбцы) звад-фмк (100 мкМ). * Р = 0,016; ** P = 0,083 (критерий Манна-Уитни, 4 независимых эксперимента). Значимых различий между клеточными линиями А431 и N18 обнаружено не было.

Изображение в натуральную величину

Поскольку инкапсулирование клеток перед облучением особенно полезно в клинических условиях при биопсии опухоли, наша цель состояла в том, чтобы выяснить, будет ли ингибирование апоптоза способствовать оценке репарации ДНК в этом контексте. Для этого мы удалили опухоли (<1000 мм ³ ), полученные из клеток NP18, из подкожной ткани голых мышей. В пробках, содержащих клетки из ксенотрансплантатов, мы воспроизвели картину фрагментации ДНК, ранее наблюдаемую в PFGE культивируемых клеток (показана на рисунке 1). В облученных клеточных пробках радиационно-индуцированные ДНК-DSB постепенно уменьшались, тогда как спонтанная фрагментация постепенно увеличивалась (рис. 5). Однако когда клеточные пробки обрабатывали zvd-fmk, специфическим ингибитором каспазы-3, спонтанная деградация ДНК ингибировалась в течение всего периода времени (9).0340 P > 0,3). Важно отметить, что радиационно-индуцированные разрывы ДНК, связанные с воссоединением, продолжали уменьшаться (рис. 5). Блокада апоптоза, таким образом, позволила нам эффективно определить воссоединение без вывода об апоптозе. Рисунок 5 иллюстрирует эффект отмены апоптоза в клетках NP18 из ксенотрансплантата, демонстрируя четкие различия между начальным и остаточным радиационным повреждением в зависимости от отсутствия или присутствия zvd-fmk. Ингибируя апоптоз, мы смогли уменьшить спонтанный разрыв ДНК и оценить воссоединение, поскольку высвобождаемая исходная ДНК за вычетом остаточной ДНК высвобождается без вмешательства апоптоза. С другой стороны, интенсивность апоптоза можно легко оценить путем вычитания общей ДНК, высвобождаемой в необлученных zvd-обработанных клеточных вставках, из необлученных необлученных необработанных zvd клеточных вставок.

Рисунок 5

Уменьшение апоптоза улучшило оценку репарации ДНК в ксенотрансплантатах NP18 . PFGE проводили в необлученных (черные столбцы) и облученных (45 Гр; белые столбцы) пробках клеток, полученных из ксенотрансплантатов (NP18), инкубированных в отсутствие или в присутствии zvd-fmk (10 мкМ). Оптическую плотность нормировали на радиационно-индуцированное начальное повреждение в отсутствие или в присутствии zvd-fmk. В отсутствие zvd-fmk спонтанная фрагментация ДНК (черные столбцы) значительно увеличивалась, в то время как радиационно-индуцированный разрыв (белые столбцы) уменьшался с течением времени. В присутствии zvd-fmk радиационно-индуцированная фрагментация уменьшалась, но блокировался спонтанный разрыв ДНК. * P < 0,05 по сравнению с оптической плотностью в момент времени 0 ч (критерий Манна-Уитни, 4 независимых эксперимента).

Изображение полного размера

Обсуждение

Считается, что специфическая радиочувствительность опухоли в значительной степени зависит от репарации ДНК, и разумно, что реакция опухоли также зависит от этой биологической переменной. Первоначально PFGE был разработан как тест для прогнозирования реакции рака на лучевую терапию. Однако вскоре после этого несколько исследований, в которых изучалась полезность метода PFGE при биопсии опухолей, пришли к выводу, что PFGE недостаточно надежен, чтобы быть прогностическим тестом, в основном из-за спонтанной фрагментации ДНК, которая происходит во время обработки образцов. В настоящем исследовании мы пересмотрели метод PFGE, чтобы продемонстрировать, что апоптоз, индуцированный агарозой, является компонентом полного разрушения ДНК, и что ингибирование апоптоза позволяет более точно оценить радиационно-индуцированную репарацию DSB ДНК и сам апоптоз. Во-первых, мы обнаружили спонтанное расщепление каспазы-3 в клеточных пробках, предполагая, что среда агарозы запускает активацию апоптоза, а во-вторых, мы ингибировали спонтанную фрагментацию ДНК в PFGE с помощью селективных и специфических ингибиторов каспазы. Это первое исследование, в котором описано, что спонтанно высвобождаемая ДНК в клеточных пробках отражает продолжающийся вызванный бездомными апоптоз, называемый аноикисом [17], когда клетки помещают в агарозу. Расщепление ДНК на большие фрагменты является ранним событием, наблюдаемым в каскаде апоптоза до того, как типичное эндонуклеазное расщепление на 180–200 п.н. может быть обнаружено как лестница ДНК [18]. Этот разрыв ДНК — именно то, что мы наблюдали в наших экспериментах, и это еще раз подтверждает апоптотическую этиологию спонтанной деградации. Кроме того, тот факт, что мы не обнаружили активации каспазы-3 в облученных клетках, растущих в виде монослоя, а активацию каспазы-3 наблюдали только в клетках, погруженных в агарозу (облученную или нет), позволяет исключить радиационно-индуцированный происхождения апоптоза.

После выяснения механизма деградации ДНК казалось разумным заключить, что инициация апоптоза происходит как в необлученных, так и в облученных клеточных пробках. Однако наши результаты показывают, что флуоресценция γh3AX, суррогатного маркера ДНК-DSB [19], продолжала прогрессивно уменьшаться, что совместимо с радиационно-индуцированной репарацией ДНК-DSB. Следует иметь в виду, что во время инкубации активация апоптоза запускалась в проценте клеток, тогда как в неапоптотических клетках происходила репарация, что мы смогли показать, исключив апоптотические клетки из количественного определения флуоресценции в клеточных пробках. Таким образом, в нашей PFGE мы получили мазки, которые представляют собой завершающую стадию двух независимых процессов — репарации ДНК и аноикиса — в каждый момент времени.

Этот тип апоптоза физиологически индуцируется для предотвращения пролиферации клеток в неподходящих местах. Опухолевые клетки, которые теряют этот гомеостатический контроль, могут развиваться независимо от опоры, что является агрессивной характеристикой различных типов злокачественных новообразований человека. Клиническое значение резистентности к аноикису все чаще связывают со злокачественными фенотипами, резистентностью к терапии и неблагоприятным прогнозом [20].

Наконец, инкубируя клеточные пробки в отсутствие или в присутствии ингибиторов каспазы, мы смогли определить два признака, связанные с агрессивностью опухоли, восстановлением ДНК и апоптозом. Разумно, что в краткосрочной схеме относительно низкая скорость высвобождения ДНК будет указывать на агрессивный фенотип, поскольку большинство радиационно-индуцированных фрагментов ДНК быстро воссоединяются (резистентность к радиации) и апоптоз не запускается (резистентность к апоптозу). В этом сценарии раковые клетки выживают в неблагоприятных условиях (т. е. при потере внеклеточного матрикса из-за уничтожения клеток радиацией) и быстро восстанавливают свой пролиферативный потенциал. С другой стороны, значительный мазок указывает на менее агрессивное поведение из-за низкой лучевой репарации и высокой чувствительности к аноикису.

Выводы

Наше исследование подтверждает предыдущие выводы о том, что апоптоз, происходящий в клетках, инкапсулированных в агарозу, мешает оценке PFGE радиационно-индуцированного анализа репарации ДНК. Однако мы обнаружили, что это вмешательство можно уменьшить с помощью ингибиторов каспаз, тем самым значительно улучшив оценку репарации ДНК в опухолевых клетках. Одновременно можно определить и апоптоз, индуцированный агарозой. Возможность одновременного определения двух признаков — репарации и апоптоза, участвующих в клеточной судьбе, открывает новые возможности для PFGE в качестве функционального анализа.

Ссылки

Blocher D, Einspenner M, Zajackowski J: Электрофорез CHEF, чувствительный метод определения разрывов двухцепочечной ДНК. Международный журнал радиационной биологии 1989, 56: 437-448. 10.1080/095530081591
КАС Статья пабмед Google ученый
McMillan TJ, Tobi S, Mateos S, Lemon C: Использование количественного определения двухцепочечных разрывов ДНК в лучевой терапии. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2001, 49: 373-377. 10.1016/С0360-3016(00)01467-С
КАС Статья пабмед Google ученый
Илиакис Г., Чеонг Н.: Воссоединение двухцепочечных разрывов геномной ДНК in vitro. Методы Мол Биол 2006, 314: 95-108. полный_текст
CAS Статья пабмед Google ученый
Дженсен А., Дебус Дж., Вебер К.Дж.: S-фаза клеточно-специфической модификации гемцитабином радиационно-индуцированной фрагментации и воссоединения ДНК, проанализированной с помощью PFGE. Международный журнал радиационной биологии 2008, 84: 770-777. 10.1080/09553000802317752
КАС Статья пабмед Google ученый
Bedford JS: Сублетальные повреждения, потенциально летальные повреждения и хромосомные аберрации в клетках млекопитающих, подвергшихся воздействию ионизирующего излучения. Int J Radiat Oncol Biol Phys 1991, 21: 1457-1469. 10.1016/0360-3016(91)
-4
КАС Статья пабмед Google ученый
Kuhne M, Riballo E, Rief N, Rothkamm K, Jeggo PA, Lobrich M: Дефект репарации двухцепочечного разрыва в ATM-дефицитных клетках способствует радиочувствительности. Исследование рака 2004, 64: 500-508. 10.1158/0008-5472.CAN-03-2384
Артикул пабмед Google ученый
«>
Нуньес М.И., Вильялобос М., Олеа Н., Валенсуэла М.Т., Педраса В., Макмиллан Т.Дж., Руис де Альмодовар Дж.М.: Радиационно-индуцированный двухцепочечный разрыв ДНК воссоединяется в опухолевых клетках человека. Br J Рак 1995, 71: 311-316. 10.1038/bjc.1995.62
PubMed Central КАС Статья пабмед Google ученый
Whitaker SJ, McMillan TJ: Гель-электрофорез в импульсном поле при измерении репарации двухцепочечных разрывов ДНК в клеточных линиях xrs-6 и CHO: деградация ДНК при некоторых условиях мешает оценке воссоединения двухцепочечных разрывов . Radiat Res 1992, 130: 389-392. 10.2307/3578387
КАС Статья пабмед Google ученый
van Waarde MA, van Assen AJ, Konings AW, Kampinga HH: Возможность измерения радиационно-индуцированных разрывов двухцепочечной ДНК и их репарации с помощью гель-электрофореза в импульсном поле в свежевыделенных клетках мышиной опухоли RIF-1. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics 1996, 36: 125-134. 10.1016/С0360-3016(96)00212-С
КАС Статья пабмед Google ученый
Вильянуэва А., Гарсия К., Паулес А.Б., Висенте М., Мегиас М., Рейес Г., де Вильялонга П., Агелл Н., Луис Ф., Бахс О., Капелла Г.: Нарушение антипролиферативных сигнальных путей TGF-бета в клетках рака поджелудочной железы человека. Онкоген 1998, 17: 1969-1978. 10.1038/sj.onc.1202118
CAS Статья пабмед Google ученый
Martinez-Quintanilla J, Cascallo M, Gros A, Fillat C, Alemany R: Положительная селекция генно-модифицированных клеток повышает эффективность суицидальной генной терапии рака поджелудочной железы. Молекулярная терапия рака 2009, 8: 3098-3107. 10.1158/1535-7163.МКТ-09-0350
КАС Статья пабмед Google ученый
«>
DiBiase SJ, Zeng ZC, Chen R, Hyslop T, Curran WJ Jr, Iliakis G: ДНК-зависимая протеинкиназа стимулирует независимо активный, негомологичный аппарат соединения концов. Исследование рака 2000, 60: 1245-1253.
КАС пабмед Google ученый
Dickson J, Magee B, Stewart A, West CM: Взаимосвязь между остаточными радиационно-индуцированными двухцепочечными разрывами ДНК в культивируемых фибробластах и поздними лучевыми реакциями: сравнение обучающих и проверочных групп пациентов с раком молочной железы. Лучевая терапия и онкология 2002, 62: 321-326.
КАС Статья Google ученый
Нуньес М.И., Герреро М.Р., Лопес Э., дель Мораль М.Р., Валенсуэла М.Т., Силес Э., Вильялобос М., Педраса В., Пикок Д.Х., Руис де Альмодовар Д.М.: Повреждение ДНК и прогнозирование радиационного ответа в лимфоцитах и эпидермальных клетках кожи человека. Int J Cancer 1998, 76: 354-361. 10.1002/(SICI)1097-0215(19980504)76:3<354::AID-IJC12>3.0.CO;2-B
CAS Статья пабмед Google ученый
Mahrhofer H, Burger S, Oppitz U, Flentje M, Djuzenova CS: Радиационно-индуцированное повреждение ДНК и репарация повреждений в опухолевых и фибробластных клеточных линиях человека, оцениваемые по фосфорилированию гистона h3AX. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2006, 64: 573-580. 10.1016/j.ijrobp.2005.09.037
CAS Статья пабмед Google ученый
Debnath J, Muthuswamy SK, Brugge JS: Морфогенез и онкогенез эпителиальных ацинусов молочной железы MCF-10A, выращенных в трехмерных культурах базальной мембраны. Методы (Сан-Диего, Калифорния 2003, 30: 256-268.
CAS Статья Google ученый
«>
Frisch SM, Screaton RA: Механизмы Anoikis. Curr Opin Cell Biol 2001, 13: 555-562. 10.1016/С0955-0674(00)00251-9
КАС Статья пабмед Google ученый
Brown DG, Sun XM, Cohen GM: Дексаметазон-индуцированный апоптоз включает расщепление ДНК на большие фрагменты до межнуклеосомной фрагментации. Журнал биологической химии 1993, 268: 3037-3039.
КАС пабмед Google ученый
Bonner WM, Redon CE, Dickey JS, Nakamura AJ, Sedelnikova OA, Solier S, Pommier Y: Gammah3AX и рак. Обзоры природы 2008, 8: 957-967. 10.1038/nrc2523
Центральный сайт PubMed КАС пабмед Google ученый
Лиотта Л.А., Кон Э: Аноикис: рак и бездомная ячейка. Природа 2004, 430: 973-974. 10.1038/430973а
КАС Статья пабмед Google ученый

Скачать ссылки

Благодарности

Авторы хотели бы отметить вклад директора Pla d’Oncologia в первоначальную организацию Программы прикладной радиобиологии Каталонии (PRACAT), а также поблагодарить за финансовую поддержку Испанская ассоциация по борьбе с раком. Мы благодарны Брэдли Дж. Лондресу за его прекрасную помощь в улучшении английского языка в рукописи.

Информация об авторе

Авторы и организации

Лаборатория трансляционных исследований — IDIBELL, Институт каталонской онкологии, L’Hospitalet de Llobregat, Испания
Josep Balart, Gemma Pueyo, Casa Omar I de Llobets, & Gabriel Capella
Отдел биостатистики и биоинформатики, Департамент эпидемиологии и регистрации рака, Каталонский онкологический институт, L’Hospitalet de Llobregat, Испания
Xavi Sole
Отделение радиационной онкологии Каталонского онкологического института, Больница Льобрегат, Испания
Susanna Marin
Отделение медицинской онкологии Каталонского онкологического института, Больница Льобрегат, Испания
Ricard Mesia
Отделение радиационной онкологии, Госпиталь Санта-Креу-и-Сант-Пау, Барселона, Испания
Josep Balart

Авторы

Josep Balart
Посмотреть публикации автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Gemma Pueyo
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Lara I de Llobet
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Marta Baro
Посмотреть публикации автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Xavi Sole
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Susanna Marin
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Oriol Casanovas
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Академия
Ricard Mesia
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar
Gabriel Capella
Просмотр публикаций автора
Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

Автор, ответственный за корреспонденцию

Хосеп Баларт.

Дополнительная информация

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Вклад авторов

JB задумал исследование и подготовил рукопись. GP, LL и MB участвовали в PFGE и в исследованиях иммунофлуоресценции. XS предоставил информатику и поддержку со статистикой для анализа данных. SM, OC, RM и GC сыграли важную роль в разработке концепции, дизайна исследования и помогли составить рукопись. Все авторы прочитали и одобрили окончательный вариант рукописи.

Оригиналы представленных авторами файлов для изображений

Ниже приведены ссылки на исходные файлы изображений, представленные авторами.

Оригинальный файл авторов для рисунка 1

Оригинальный файл авторов для рисунка 2

Оригинальный файл авторов для рисунка 3

Оригинальный файл авторов для рисунка 4

. файл для рисунка 5

Права и разрешения

Эта статья опубликована по лицензии BioMed Central Ltd. Это статья с открытым доступом, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution (http://creativecommons.org/licenses/ by/2.0), что разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии надлежащего цитирования оригинальной работы.

Перепечатки и разрешения

Об этой статье

Анализ крови на фторид — отравление фтором

Анализ крови на фторид — отравление фтором — запросить тест
Национальный лидер в области доступных лабораторных испытаний непосредственно для потребителей
Войти / Зарегистрироваться Корзина 0 1-888-732-2348 Хабламос Эспаньол
Фтор, кровь
79 $
ЛабКорп 209 долларов
Квест
Шаг 1
Заказ

Ваши тесты
Шаг 2
Отправляйтесь в лабораторию

Шаг 3
Получите результаты

Шаг 1
Заказ
Ваши тесты
Шаг 2
Отправляйтесь в
Лабораторию
Шаг 3
Получите результаты
ЛабКорп: $79
Квест: 209 долларов
$79. 00 ЗАКАЗАТЬ СЕЙЧАС
Образец отчета
Код теста: 070060
Тип образца: Кровь
Описание:
Анализ крови на фторид0093 используется для измерения воздействия фтора в окружающей среде или на рабочем месте . Фтор — это минерал, который важен для развития здоровых зубов и костей. Чрезмерное воздействие фтора может вызвать такие симптомы, как проблемы с дыханием, боли в животе и неврологические проблемы. Со временем воздействие фтора может привести к ослаблению костей и повреждению почек, щитовидной железы и головного мозга. Фторид используется в ряде отраслей , таких как производство стекла, алюминия, железа, стали, нефти и удобрений. Он также часто встречается в химических веществах, используемых для уничтожения насекомых и грызунов, и может быть обнаружен в питьевой воде. Хотя фторид может быть обнаружен в таких продуктах, как зубная паста или витамины, редко возникают побочные эффекты, если только человек не проглатывает эти продукты в больших количествах.
В то время как анализ крови обычно показывает, подвергался ли человек недавно воздействию большого количества фтора, он может быть не таким точным, как анализ мочи для выявления хронического воздействия . Человек, у которого есть основания полагать, что он страдает от воздействия фтора, но показывает нормальный уровень в анализе крови, может пожелать рассмотреть возможность заказа теста на фторид в моче.
Этот тест обычно назначают, когда кто-то испытывает симптомы воздействия фтора, особенно если он имел контакт с химическими веществами, содержащими фторид, или работал в отрасли, где воздействие фторида в воздухе является обычным явлением.
Срок выполнения анализа крови на фторид обычно составляет 3–5 рабочих дней.
Примечание. Время обработки результата является приблизительным и не гарантируется. Нашей референс-лаборатории может потребоваться дополнительное время из-за погодных условий, праздников, подтверждения/повторного тестирования или технического обслуживания оборудования.
Категории:
Заболевания почек
Опорно-двигательный аппарат
Щитовидная железа

209,00 долларов США ЗАКАЗАТЬ СЕЙЧАС
Образец отчета
Испытательный код: 949
Образец Тип: Кровь
Описание:
Фторидный анализ кровя
Кровавый тест .0143 воздействие фтора в окружающей среде или на рабочем месте . Фтор — это минерал, который важен для развития здоровых зубов и костей. Чрезмерное воздействие фтора может вызвать такие симптомы, как проблемы с дыханием, боли в животе и неврологические проблемы. Со временем воздействие фтора может привести к ослаблению костей и повреждению почек, щитовидной железы и головного мозга. Фторид используется в ряде отраслей , таких как производство стекла, алюминия, железа, стали, нефти и удобрений. Он также часто встречается в химических веществах, используемых для уничтожения насекомых и грызунов, и может быть обнаружен в питьевой воде. Хотя фторид может быть обнаружен в таких продуктах, как зубная паста или витамины, редко возникают побочные эффекты, если только человек не проглатывает эти продукты в больших количествах.
В то время как анализ крови обычно показывает, подвергался ли человек недавно воздействию большого количества фтора, он может быть не таким точным, как анализ мочи для выявления хронического воздействия . Человек, у которого есть основания полагать, что он страдает от воздействия фтора, но показывает нормальный уровень в анализе крови, может пожелать рассмотреть возможность заказа теста на фторид в моче.
Этот тест обычно назначают, когда кто-то испытывает симптомы воздействия фтора, особенно если он имел контакт с химическими веществами, содержащими фторид, или работал в отрасли, где воздействие фторида в воздухе является обычным явлением.
Срок выполнения анализа крови на фторид обычно составляет 3–5 рабочих дней.
Примечание. Время обработки результата является приблизительным и не гарантируется. Нашей референс-лаборатории может потребоваться дополнительное время из-за погодных условий, праздников, подтверждения/повторного тестирования или технического обслуживания оборудования.
Категории:
Заболевания почек
Опорно-двигательный аппарат
Щитовидная железа

Купить Labcorp: $79.00
Отчет выборки
Тестовый код: 070060
Образец Тип: Кровь
Описание:
Тест Флуорида
Тест Флуорид
Тест Флуорид
. фторировать . Фтор — это минерал, который важен для развития здоровых зубов и костей. Чрезмерное воздействие фтора может вызвать такие симптомы, как проблемы с дыханием, боли в животе и неврологические проблемы. Со временем воздействие фтора может привести к ослаблению костей и повреждению почек, щитовидной железы и головного мозга. Фторид используется в ряде отраслей , таких как производство стекла, алюминия, железа, стали, нефти и удобрений. Он также часто встречается в химических веществах, используемых для уничтожения насекомых и грызунов, и может быть обнаружен в питьевой воде. Хотя фторид может быть обнаружен в таких продуктах, как зубная паста или витамины, редко возникают побочные эффекты, если только человек не проглатывает эти продукты в больших количествах.
В то время как анализ крови обычно показывает, подвергался ли человек недавно воздействию большого количества фтора, он может быть не таким точным, как анализ мочи для выявления хронического воздействия . Человек, у которого есть основания полагать, что он страдает от воздействия фтора, но показывает нормальный уровень в анализе крови, может пожелать рассмотреть возможность заказа теста на фторид в моче.
Этот тест обычно назначают, когда кто-то испытывает симптомы воздействия фтора, особенно если он имел контакт с химическими веществами, содержащими фторид, или работал в отрасли, где воздействие фторида в воздухе является обычным явлением.
Срок выполнения анализа крови на фторид обычно составляет 3–5 рабочих дней.
Примечание. Время обработки результата является приблизительным и не гарантируется. Нашей референс-лаборатории может потребоваться дополнительное время из-за погодных условий, праздников, подтверждения/повторного тестирования или технического обслуживания оборудования.
Категории:
Заболевания почек
Опорно-двигательный аппарат
Щитовидная железа

Купить квест: $209.00
Отчет выборки
Тестовый код: 949
Образец Тип: Blood
Описание:
Тест Флуорида
. фторировать . Фтор — это минерал, который важен для развития здоровых зубов и костей. Чрезмерное воздействие фтора может вызвать такие симптомы, как проблемы с дыханием, боли в животе и неврологические проблемы. Со временем воздействие фтора может привести к ослаблению костей и повреждению почек, щитовидной железы и головного мозга. Фторид используется в ряде отраслей , таких как производство стекла, алюминия, железа, стали, нефти и удобрений. Он также часто встречается в химических веществах, используемых для уничтожения насекомых и грызунов, и может быть обнаружен в питьевой воде. Хотя фторид может быть обнаружен в таких продуктах, как зубная паста или витамины, редко возникают побочные эффекты, если только человек не проглатывает эти продукты в больших количествах.
В то время как анализ крови обычно показывает, подвергался ли человек недавно воздействию большого количества фтора, он может быть не таким точным, как анализ мочи для выявления хронического воздействия .