Торговый Дом «Аюрведа» — аюрведа оптом

Состав хлоргексидина: Хлоргексидин инструкция по применению: показания, противопоказания, побочное действие – описание Chlorhexidine р-р д/местн. и наружн. прим. 5%: фл. 25 мл, 50 мл, 70 мл, 100 мл, 200 мл, 500 мл или 1000 мл; бутыли 3 л или 5 л; канистры 3 л или 5 л (21450)

Содержание

Влияние кавитированного низкочастотным ультразвуком раствора хлоргексидина на количественный и видовой состав лактофлоры влагалища

УДК 618.15

DOI: 10.22138/2500-0918-2016-14-4-52-60

Уральский государственный медицинский университет, г. Екатеринбург, Российская Федерация;
Медицинский центр «Гармония», г. Екатеринбург, Российская Федерация

Резюме.
С целью оценки влияния кавитированного низкочастотным ультразвуком 0,05% раствора хлоргексидина на количественный и видовой состав лактофлоры влагалища в исследование были включены 154 женщины репродуктивного возраста. Всем женщинам проводили обработку влагалища кавитированным низочастотным ультразвуком водным 0,05% раствором хлоргексидина (КНУЗ РХ) с помощью аппарата АУЗХ-100: время воздействия — 1–2 минуты, мощность — 6–8 единиц, объем используемого раствора — 150–200 мл.Состояние микробиоценоза влагалища и долю каждого вида лактобацилл определяли методом ПЦР с детекцией результатов в реальном времени (ПЦР-РВ). Исследование проводили дважды: до (на этапе первичного консультирования) и после обработки влагалища и экзоцервикса КНУЗ РХ.В зависимости от доминирующего вида лактобацилл всех пациенток разделили на пять групп: с преобладанием вида L. crispatus, L. iners, L. jensenii, L. gasseri, L. vaginalis. При доминировании видов L. crispatus и L. iners сохранение или увеличение суммарной доли лактобацилл в микробиоценозе после обработки влагалища КНУЗ РХ отмечали в 84% и 98% случаев, соответственно, при доминировании L. gasseri — лишь в 59% случаев. Количество и перечень одновременно выявляемых видов после обработки не изменялись ни у одной из пациенток. У большинства наблюдаемых женщин (77,5%) доминирующий вид лактобацилл остался неизменным, изменение доминирующего вида отмечали, соответственно, в 22,5%. Смена господствующего вида во всех случаях происходила на присутствовавший ранее в микробиоценозе вид, но в меньшей доле, а ранее доминировавший вид при этом сохранялся, но уже в качестве сопутствующего. Смену доминирующего вида чаще фиксировали на фоне изначального преобладания L. gasseri (у 3 из 6 пациенток). Установлено, что влияние КНУЗ РХ на структуру лактофлоры ограничено и обусловлено изначальным видовым составом вагинальных лактобацилл.

Ключевые слова:
микробиоценоз влагалища, лактобациллы, кавитированный раствор хлоргексидина, ПЦР в реальном времени, L. crispatus, L. iners, L. Gasseri

ЛИТЕРАТУРА
1. Lauer E, Helming C, Kandler O. Heterogeneity of the species Lactobacillus acidophilus (Moro) Hansen and Mocquot as revealed by biochemical characteristics and DNA-DNA hybridization. Zentbl Bakteriol Microbiol Hyg Abt 1980;1:150–68.
2. Johnson JL, Phelps CF, Cummins CS, London J, Gasser F. Taxonomy of the Lactobacillus acidophilus Group. Int J Syst Bacteriol 1980;30:53–68.
3. Falsen E, Pascual C, Sjoden B, Ohlen M, Collins MD. Phenotypic and phylogenetic characterization of a novel Lactobacillus species from human sources: description of Lactobacillus iners sp.  nov. Int J Syst Bacteriol 1999;49:217–21.
4. Schleifer KH, Ludwig W. Phylogeny of the genus Lactobacillus and related genera. Syst Appl Microbiol 1995;18:461–7.
5. Wilks M, Wiggins R, Whiley A, Hennessy E, Warwick S, Porter H, et al. Identification and H(2)O(2) production of vaginal lactobacilli from pregnant women at high risk of preterm birth and relation with outcome. J Clin Microbiol. 2004 Feb;42(2):713-7.
6. Balashov SV, Mordechai E, Adelson ME, Sobel JD, Gygax SE. Multiplex quantitative polymerase chain reaction assay for the identification and quantitation of major vaginal lactobacilli. Diagn Microbiol Infect Dis. 2014 Apr;78(4):321-7.
7. Fredricks DN. Molecular methods to describe the spectrum and dynamics of the vaginal microbiota. Anaerobe. 2011 Aug;17(4):191-5.
8. Shi Y, Chen L, Tong J, Xu C. Preliminary characterization of vaginal microbiota in healthy Chinese women using cultivation-independent methods. J Obstet Gynaecol Res. 2009 Jun;35(3):525-32.
9. Rodriguez JM, Collins MD, Sjoden B, Falsen E. Characterization of a novel Atopobium isolate from the human vagina: description of Atopobium vaginae sp. nov. Int J Syst Bacteriol 1999;49:1573–6.
10. Zhou X, Bent SJ, Schneider MG et al. Characterization of vaginal microbial communities in adult healthy women using cultivation-independent methods. Microbiology 2004; 150: 2565-2573.
11. Zhou X, Brown CJ, Abdo Z, Davis CC, Hansmann MA, Joyce P, et al. Differences in the composition of vaginal microbial communities found in healthy Caucasian and black women. ISME J 2007;1:121–33.
12. Ворошилина Е.С., Донников А.Е., Плотко Е.Э., Тумбинская Л.В., Хаютин Л.В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? Акушерство и гинекология. 2011; 1: 57-65.
13. Turovskiy Y, Noll KS, Chikindas ML. The etiology of bacterial vaginosis. J Appl Microbiol. 2011 May;110(5):1105-28.
14. Bradshaw CS, Morton AN, Hocking J, Garland SM, Morris MB, Moss LM, et al.  High recurrence rates of bacterial vaginosis over the course of 12 months after oral metronidazole therapy and factors associated with recurrence. J Infect Dis 2006;193:1478–86.
15. Sanchez S, Garcia PJ, Thomas KK, Catlin M, Holmes KK. Intravaginal metronidazole gel versus metronidazole plus nystatin ovules for bacterial vaginosis: a randomized controlled trial. Am J Obstet Gynecol 2004;191:1898–906.
16. Sobel JD, Ferris D, Schwebke J, Nyirjesy P, Wiesenfeld HC, Peipert J, et al. Suppressive antibacterial therapy with 0.75% metronidazole vaginal gel to prevent recurrent bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol 2006;194:1283–9.
17. Swidsinski A, Mendling W, Loening-Baucke V, Ladhoff A, Swidsinski S, Hale LP, Lochs H. Adherent biofilms in bacterial vaginosis. Obstet Gynecol. 2005 Nov;106(5 Pt 1):1013-23.
18. Swidsinski A, Mendling W, Loening-Baucke V, Swidsinski S, Dorffel Y, Scholze J, Lochs H, Verstraelen H. An adherent Gardnerella vaginalis biofilm persists on the vaginal epithelium after standard therapy with oral metronidazole. Am J Obstet Gynecol 2008;198:97.e1–6.
19. Brooun A, Liu S, Lewis K. A dose-response study of antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms. Antimicrob Agents Chemother. 2000 Mar;44(3):640-6.
20. Ворошилина Е.С., Тумбинская Л.В., Донников А.Е. Современные возможности диагностики бактериального вагиноза: исследование количественного и качественного состава сложных микробных сообществ. Уральский медицинский журнал. 2011; 13(91): 70-5.
21. Bartley J, Young D. Ultrasound as a treatment for chronic rhinosinusitis. Med. Hypotheses. 2009; 73(1): 15-17.
22. Обоскалова Т.А., Глухов Е.Ю., Лаврентьева И.В., Нефф Е.И., Судаков Ю.Е. Плотко Е.Э. Растворы, кавитированные низкочастотным ультразвуком, – альтернатива антибиотикам? StatusPraesens. 2012; 3 (9): 65-9.
23. Широкова Д.В., Калинина Е.А., Плотко Е.Э. Эффективность низкочастотной ультразвуковой кавитации при коррекции нарушений влагалищной флоры. В кн.: Сухих Г.Т., ред. Материалы XIV Всероссийского научного форума «Мать и дитя».  М.; 2013; 369-370.
24. Плотко Е.Э., Зорников Д.Л., Хаютин Л.В., Ворошилина Е.С. Дисбиоз влагалища: видовой состав лактофлоры и возможности немедикаментозной коррекции. Акушерство и гинекология. 2015; 10: 112-117
25. Зорников Д.Л., Тумбинская Л.В., Ворошилина Е.С. Взаимосвязь отдельных видов лактобацилл с суммарной долей лактофлоры в вагинальном микробиоценозе и группами условно-патогенных микроорганизмов, ассоциированными с дисбиозом влагалища. Вестник уральской медицинской академической науки. 2015; 4 (55): 99-105
26. Ravel J, Brotman RM, Gajer P, Ma B, Nandy M, Fadrosh DW, Sakamoto J, Koenig SS, Fu L, Zhou X, Hickey RJ, Schwebke JR, Forney LJ. Daily temporal dynamics of vaginal microbiota before, during and after episodes of bacterial vaginosis. Microbiome. 2013 Dec 2;1(1):29.
27. Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SS, McCulle SL, Karlebach S, Gorle R, Russell J, Tacket CO, Brotman RM, Davis CC, Ault K, Peralta L, Forney LJ. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci USA. 2011 Mar 15;108 Suppl 1:4680-7.
28. Ворошилина Е.С., Зорников Д.Л., Плотко Е.Э. Коррекция дисбиоза влагалища кавитированным раствором хлоргексидина в первом триместре беременности: эффективность и безопасность. Журнал акушерства и женских болезней. 2014; 63 (5): 29-37.
29. Обоскалова Т.А., Глухов Е.Ю., Лаврентьева И.В. и др. Профилактика и лечение воспалительных заболеваний в акушерстве и гинекологии с использованием метода ультразвуковой кавитации лекарственных растворов. Екатеринбург: Vip-Ural; 2014.
30. Konopka A. What is microbial community ecology? ISME J. 2009 Nov;3(11):1223-30

Авторы
Ворошилина Екатерина Сергеевна
Уральский государственный медицинский университет
д.м.н., доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Российская Федерация, 620109, Екатеринбург, ул. Ключевская, 17
[email protected]

Плотко Евгений Эдуардович
Медико-фармацевтический центр «Гармония»
д.м.н., доцент, главный врач
Российская Федерация, 620026, Екатеринбург, ул. Тверитина 16
[email protected]

Хаютин Леонид Валерьевич
Медико-фармацевтический центр «Гармония»
Врач акушер-гинеколог
Российская Федерация, 620026, Екатеринбург, ул. Тверитина 16
[email protected]

Зорников Данила Леонидович
Уральский государственный медицинский университет
Аспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии
Российская Федерация, 620109, Екатеринбург, ул. Ключевская, 17
[email protected]

Дата поступления 05.09.2016

Образец цитирования:
Ворошилина Е.С., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В., Зорников Д.Л. Влияние кавитированного низкочастотным ультразвуком раствора хлоргексидина на количественный и видовой состав лактофлоры влагалища. Вестник уральской медицинской академической науки. 2016, №4, с. 52–60, DOI: 10.22138/2500-0918-2016-14-4-52-60


Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial» («Атрибуция — Некоммерческое использование») 4.0 Всемирная.

инструкция по применению, классификация, статьи » Справочник ЛС

ГлавнаяХлоргексидин

Хлоргексидина биглюконат

Флакон 100 мл содержит:

действующее вещество: хлоргексидина биглюконат (в виде Дезина – хлоргексидина биглюконата концентрата 200 мг/мл) – 50 мг;

вспомогательное вещество: вода очищенная – до 100 мл.

Описание: Бесцветная или слегка желтоватая жидкость без запаха.

Антисептическое средство, обладающее выраженным бактерицидным действием в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий (не влияет на кислотоустойчивые формы последних): Treponema pallidum, Chlamidia spp., Ureaplasma spp., Neisseria gonorrhoeae, Gardnerella vaginalis, Bacteroides fragilis, простейших (Trichomonas vaginalis), микробных спор, вирусов, грибов; слабо влияет на некоторые виды протея и псевдомонад. Хлоргексидина биглюконат активен также в отношении трепонем, гонококков, трихомонад. Сохраняет активность (несколько сниженную) в присутствии крови, гноя. Очищает и обеззараживает кожу, не вызывая ее повреждения.

Практически не всасывается из ЖКТ. После случайного проглатывания 300 мг Cmax достигается через 30 мин и составляет 0,206 мкг/л. Выводится в основном с каловыми массами (90%), менее 1% — почками.

Лекарственное средство применяется для профилактики венерических заболеваний (сифилиса, гонореи, трихомониаза, хламидиоза и др.).

Применяется для антисептической обработки ран, потертостей и трещин, ожогов, бактериальных и грибковых заболеваниях кожи и слизистых оболочек, в т.ч. в урологии, хирургии, акушерстве-гинекологии.

В стоматологии используется для полоскания полости рта в тех случаях, когда затруднено соблюдение правил гигиены, в послеоперационном периоде после лоскутных операций на пародонте, для промываний зубодесневых карманов, свищей, полостей абсцессов. Поскольку хлоргексидина биглюконат оказывает цитотоксическое действие концентрация раствора для полоскания не должна превышать 0,25 мг/мл.

Гиперчувствительность, дерматит, вирусные заболевания кожи, возраст до 12 лет.

Не рекомендуется применять для обработки ран с большой поверхностью.

Применение во время беременности и в период лактации. Перед применением лекарственного средства во время беременности и в период лактации необходимо проконсультироваться с врачом. Не обрабатывать поверхность молочных желез перед кормлением.

Лекарственное средство применяется в виде орошений, полосканий и аппликаций – 5-10 мл раствора наносят на пораженную поверхность кожи или слизистых оболочек с экспозицией 1-3 мин 2-3 раза в сутки (на тампоне или путем орошения).

Для профилактики заболеваний, передающихся половым путем, лекарственное средство эффективно, если применяется не позднее 2 ч после полового акта. Применяется после мочеиспускания: с помощью насадки ввести в мочеиспускательный канал мужчинам (2-3 мл), женщинам в мочеиспускательный канал (1-2 мл) и во влагалище (5-10 мл) и задержать на 2-3 минуты. Обработать кожу внутренних поверхностей бедер, лобка, половых органов. После процедуры не рекомендуется мочиться в течение 2 часов.

Комплексное лечение уретритов и уретропростатитов проводят путем впрыскивания в уретру 2-3 мл лекарственного средства 1-2 раза в день, курс – 10 дней, процедуры назначают через день. Раствор для полоскания назначают обычно 2-3 раза в сутки (для полосканий полости рта лекарственное средство следует смешать с равным количеством воды).

Бактерицидное действие усиливается с повышением температуры. При температуре выше 100 ºС лекарственное средство частично разлагается. Попадание гипохлоритных отбеливающих веществ на ткани, которые ранее находились в контакте с содержащими хлоргексидин препаратами, может способствовать появлению на них коричневых пятен.

У пациентов с открытой ЧМТ, повреждениями спинного мозга, перфорацией барабанной перепонки следует избегать попадания на поверхность головного мозга, мозговых оболочек и в полость внутреннего уха. В случае попадания на слизистые оболочки глаза их следует быстро и тщательно промыть водой.

Возможны аллергические реакции (кожная сыпь), сухость и зуд кожи, дерматит, фотосенсибилизация, липкость кожи рук (в течение 3-5 мин). При лечении гингивитов – окрашивание эмали зубов, отложение зубного камня, нарушение вкуса.

Случаи передозировки при наружном применении неизвестны. При попадании внутрь препарат практически не абсорбируется, поэтому системные эффекты маловероятны. Тем не менее, при случайном проглатывании необходимо провести промывание желудка. При необходимости проводят симптоматическую терапию.

Не совместим с детергентами, содержащими анионную группу (сапонины, натрия лаурилсульфат, натрия карбоксиметилцеллюлоза). Не рекомендуется одновременное применение с йодом.

Присутствие мыла может инактивировать хлоргексидина биглюконат, поэтому перед использованием лекарственного средства остатки мыла необходимо тщательно смыть. Этанол усиливает эффективность лекарственного средства.

Условия хранения

Хранить при температуре не выше 25 ºС.

Хранить в недоступном для детей месте.

Срок годности

2 года.

Не использовать по истечении срока годности.

OKVET® шампунь профилактический с хлоргексидином: инструкция, описание

Преимущества:


  • Уникальная комбинация натуральных экстрактов целебных трав и антисептика.
  • Сочетает антисептическое, противовоспалительное и смягчающее действие.
  • Способствует быстрому очищению ран, стимулирует заживление поврежденных тканей.
  • Предотвращает образование перхоти, устраняет сухость и шелушение кожи.


Состав и фармакологические свойства.

Лекарственный препарат в качестве действующего вещества в 1 мл содержит хлоргексидина биглюконат — 1 мг, а также вспомогательные вещества: воду очищенную, лауретсульфат натрия, коко-гликозид, диэтаноламид жирных кислот кокосового масла, глицерин, натрий хлористый, D-пантенол, аллантоин, экстракт чистотела, экстракт подорожника, метилхлороизотиазолинон и метилизотиазолинон , кислоту лимонную.

Хлоргексидина биглюконат, входящий в состав препарата, является дихлорсодержащим производным бигуанида. Оказывает антисептическое (противомикробное, противогрибковое и вирулицидное) действие, активен в отношении грамотрицательных и грамположительных аэробных и анаэробных бактерий (Klebsiella spp., Salmonella spp., Escherichia coli, Proteus spp., Staphylococcus spp. (в т.ч. Staphylococcus aureus МRSA), Streptococcus spp., Micrococcus spp., Bacillus spp., Corynebacterium pyogenes, Campylobacter fetus, Enterobacter spp., Chlamydia spp., Ureaplasma spp., Pseudomonas spp.), простейших (Trichomonas foetus), грибов рода Microsporum, Trichophyton, Epidermophyton и дрожжеподобных грибов родов Candida и Malassezia, липофильных вирусов (грипnа, ротавирусов, энтеровирусов).

Механизм действия хлоргексидина заключается во взаимодействии с фосфатными группами на поверхности микробной клетки, при этом липофильные группы препарата способствуют дезагрегации липопротеиновой мембраны бактерий, нарушая тем самым осмотическое равновесие бактериальных клеток, выход из них калия и фосфора, что ведет к гибели микроорганизма.

Клинически доказана эффективность хлоргексидина в присутствии крови и гноя, различных секретов и органических веществ.

Применение препарата способствует быстрому очищению ран, стимулирует заживление поврежденных тканей, активизирует обменные процессы в волосяных луковицах и коже, стимулирует восстановление защитных функций эпидермиса, устраняет сухость и шелушение кожи, предотвращает образование перхоти, облегчает расчесывание и предотвращает спутывание шерсти, способствует удалению продуктов воспаления, микроорганизмов и аллергенов с кожи и шерсти животного, ликвидирует причину неприятного запаха кожи и шерсти.

Показания к применению.

«ОКVЕТ® шампунь профилактический с хлоргексидином» назначают собакам и кошкам в качестве антисептического средства для лечения мелких ран, ссадин, порезов и других заболеваний кожи, осложненных бактериальной инфекцией, в комплексе с симптоматическими и патогенетическими средствами, а также для профилактики осложнений различных повреждений кожи после стрижки и тримминга.

 

«ОКVЕТ® шампунь профилактический с хлоргексидином» сочетает в себе лечебное и косметическое действие. Применение препарата способствует быстрому очищению ран, стимулирует заживление поврежденных тканей, активизирует обменные процессы в волосяных луковицах и коже, стимулирует восстановление защитных функций эпидермиса, устраняет сухость и шелушение кожи, предотвращает образование перхоти, облегчает расчесывание и предотвращает спутывание шерсти, способствует удалению продуктов воспаления, микроорганизмов и аллергенов с кожи и шерсти животного, ликвидирует причину неприятного запаха кожи и шерсти.

Противопоказания

Противопоказанием к применению «ОКVЕT® шампунь профилактический с хлоргексидином»  является индивидуальная повышенная чувствительность к компонентам лекарственного препарата (в том числе в анамнезе), а также мокнущие экземы и дерматиты аллергической этиологии.

Самкам в период беременности и вскармливания приплода  «ОКVЕT® шампунь профилактический с хлоргексидином» , при необходимости, применяют под контролем ветеринарного врача на основании оценки отношения ожидаемой пользы к возможному риску его применения.

Дозы и порядок применения.

«ОКVЕT® шампунь профилактический с хлоргексидином» равномерно наносят на смоченную теплой водой шерсть животного из расчета 0,5-1 мл на 1 кг массы животного, равномерно распределяя по поверхности тела и избегая попадания в глаза, уши и рот, слегка втирая до образования пены, и смывают теплой водой. Процедуру повторяют, оставляя шампунь на кожно-волосяном покрове на 5-7 минут, после чего шампунь необходимо тщательно смыть теплой водой, шерсть высушить и расчесать.

Лечебную обработку проводят один раз в сутки в течение 3-5 дней. С профилактической целью препарат применяют однократно. 

Побочные явления.

При применении препарата «ОКVЕT® шампунь профилактический с хлоргексидином»  в соответствии с настоящей инструкцией побочных явлений и осложнений, как правило, не наблюдается. При повышенной индивидуальной чувствительности и появлении аллергических реакций  использование препарата прекращают и при необходимости назначают животному антигистаминные препараты и средства симптоматической терапии.

Хранение.

«ОКVЕТ® шампунь профилактический с хлоргексидином» хранят в закрытой упаковке производителя, в защищенном от прямых солнечных лучей месте, отдельно от продуктов питания и кормов, при температуре от 0°С до 25°С.Срок годности препарата — 3 (три) года со дня производства, после первого вскрытия флакона — 6 месяцев.

Форма выпуска.

Выпускают препарат расфасованным по250 мл в полимерные флаконы, укупоренные полимерной крышкой. 


Для чего применяется Хлоргексидин биглюконат, для чего можно использовать? Состав Хлоргексидина, применение

При лечении воспалительных заболеваний назначаются препараты, которые не только уничтожают инфекцию, но и восстанавливают слизистую или дерму, для чего применяется Хлоргексидин биглюконат. Считается лекарством широкого спектра, справляется практически со всеми бактериями и грибками. Известно, как проверенное средство дезинфекции в хирургии и косметологии, не пересушивает кожу.

Хлоргексидин биглюконат – что это?

О том, что такое Хлоргексидин биглюконат, большинство бывших граждан СССР узнали не слишком давно, хотя в Европе этим препаратом активно пользовались еще с середины прошлого века. После всестороннего изучения состава этот антисептик медики признали эффективным и безопасным, что сразу увеличило его популярность. Особенно ценится способность раствора справляться с любыми возбудителями инфекций.

Состав Хлоргексидина

Перечень, для чего применяется Хлоргексидин биглюконат, весьма обширен, препарат назначают для лечения, как внешних, так и внутренних воспалений. Разница – в концентрации и способах применения. Важно учитывать, что активность компонентов возрастает при повышении температуры, если она достигает 100ºС, состав начинает частично разлагаться. Справляется раствор и с гнойными ранами, очищает и дезинфицирует любые повреждения тканей и слизистой.

Выпускается препарат в стеклянных или полимерных флаконах. Химический состав Хлоргексидина строится на одноименном веществе, его количество зависит от процента раствора:

  • в растворе 0,05% содержится 0,5 мг Хлоргексидина;
  • в 20% раствор входит 0,2 г активного вещества.

Свойства Хлоргексидина

В большинстве случаев, для чего применяется Хлоргексидин биглюконат, это дезинфекция кожи и поверхностей разных предметов. Фармацевты относят препарат к производным бигуанида, в готовом виде Хлоргексидин содержится в виде биглюконата. Состав раствора разрушает мембраны вирусов и грибков, даже липидные, что приводит к их полному уничтожению.

Характерные дезинфицирующие свойства Хлоргексидина:

  • антисептические;
  • антибактериальные.

Для чего можно использовать Хлоргексидин биглюконат?

При определении заболеваний, от чего помогает Хлоргексидин биглюконат, важно учитывать особенности его состава. Исследования показали, что препарат уничтожает, как грамположительные, так и грамотрицательные бактерии, чем выгодно отличается от других лекарственных средств. Но при этом малоэффективен против псевдомонад и лактобактерий.

Рекомендации, для чего применяется антисептик Хлоргексидин биглюконат:

  • уничтожение инфекции;
  • очистка ран;
  • лечение воспаления;
  • обеззараживание кожи или инструментов.

Хлоргексидин биглюконат – применение

Без этого препарата не обходятся медики, им обрабатывают не только инструменты, но и зоны для операции. Широко применяется для профилактики инфекции, лечения слизистой. Считается безопасным детей, беременных и кормящих мам, хотя врачи все же рекомендуют соблюдать осторожность. Деткам предпочтительнее применять с 12 лет. Перед лечением желательно протестировать препарат на отсутствие аллергии, для этого несколько капель раствора наносят на запястье. Если спустя 2-3 ч не проявляются покраснение или зуд, лекарство можно использовать.

Характерное применение Хлоргексидина:

  • обработка и лечение ран, порезов, ожогов;
  • лечение сыпи, прыщей, угрей, стоматита, пародонтоза, гингивита, фарингита,
  • тонзиллита;
  • обработка зубных протезов;
  • дезинфекция рук, хирургических инструментов;
  • обеззараживание любых поверхностей.

Хлоргексидина биглюконат – применение в косметологии

Благодаря мощным антибактериальным свойствам, нашел применение Хлоргексидин биглюконат для лица, в косметологии его рекомендуют для лечения гнойных воспалений кожи. Угри, акне, пиодермия, импетиго – все эти проблемы дермы поддаются обработке таким раствором. Важно, что препарат еще помогает выталкивать продукты распада при уничтожении микробов.

Как применять Хлоргексидин биглюконат от прыщей:

  1. Дважды в сутки точечно обрабатывать пораженные места смоченной ватной палочкой. Через 10 мин. смазать Левомеколем.
  2. При сильных, обширных высыпаниях протирать кожу дважды в сутки, с последующей обработкой противовоспалительной мазью.
  3. Делать аппликации, смоченную салфетку фиксируют на гнойнике 10 мин., затем дерму смазывают мазью.

Хлоргексидина биглюконат – применение в отоларингологии

Часто рекомендуют врачи Хлоргексидин биглюконат для полоскания горла, он быстро снимает боль, убирает воспаление миндалин, глотки и гортани. В сложных случаях прописывается, как дополнение к основному курсу лечения ангины, фарингита, тонзиллита. Подойдут для полосканий и 0,2%, и 0,5% растворы, но если во время процедуры возникает жжение, то раствор нужно разбавить.

Как применять Хлоргексидин при ангине:

  1. Прополоскать горло подогретой водой.
  2. Отмерить 1 ст. ложку раствора, влить в рот.
  3. Задержать в горле 30 сек., проговаривая «ы».
  4. Полчаса после процедуры не кушать и не пить.

Хлоргексидин биглюконат – применение в стоматологии

У многих людей возникают воспалительные процессы на слизистой рта, для чего применяется Хлоргексидин биглюконат в стоматологии. Препарат справляется со стоматитами, язвами во рту, афтами, периодонтом. Способствует более быстрому заживлению лунки после удаления зуба, операций на деснах, рекомендуется для обработки съемных ортопедических зубных конструкций.

Разводить препарат не нужно, если это 0,05%. Применение Хлоргексидина в стоматологии, частота полосканий и дозировка зависят от диагноза:

  • сложное удаление зуба;
  • инфекция;
  • плохая гигиена рта;
  • обширный кариес.

Рекомендации, как применятьХлоргексидин биглюконат для полоскания зубов:

  1. Набрать в рот порцию раствора.
  2. Подержать 1,5-2 мин., если удален зуб, гонять жидкость по рту не нужно.
  3. Выплюнуть лекарство, полчаса не кушать и не пить.
  4. Проводить процедуры трижды в сутки.
  5. Курс рассчитан на 5-10 дней.

Хлоргексидин биглюконат – применение в дерматологии

Вспышка короновируса заставила многих людей запасаться антисептиками, особую популярность приобрел Хлоргексидин биглюконат для дезинфекции рук. Это средство выгодно тем, что не сушит кожу, не имеет резкого запаха и не оставляет жирных следов. В плюсе и то, что флакончики удобно брать с собой. Для обработки хватит растереть немного раствора между ладонями и пальцами, дать коже высохнуть. В дерматологии Хлоргексидин активно применяется и для обработки пораженной кожи, используют растворы от 0,05% до 0,5%.

Правила применения:

  • при ранах и ожогах наносят 5-10 мл препарата в виде аппликации на 1-2 мин.;
  • при лечении панариция делают марлевую повязку, смоченную раствором, меняют через несколько часов.

Хлоргексидина биглюконат – применение в гинекологии

Распространено применение Хлоргексидина в гинекологии, врачи назначают не только раствор, но и спрей или вагинальные свечи. Жидкую форму применяют при обработке швов после операций, эффективен препарат и для профилактики уреаплазмозы, хламидиозы, трихомониаза, сифилиса, гонореи, обеспечивает нужную среду после незащищённого сексуального контакта.

В каких случаях оправдано применение Хлоргексидина в гинекологии для женщин:

  • кольпит;
  • вагинит;
  • цервицит;
  • кандидоз;
  • вульвовагинит;
  • бактериальный вагиноз;
  • молочница.

Какое применение Хлоргексидина в гинекологии:

  1. Орошение. Обрабатывается поврежденный участок с помощью спрея.
  2. Спринцевание. Вводится 10-15 мл раствора, частота и длительность процедур определяется диагнозом.
  3. Аппликация. Вводится смоченный лекарством тампон, рекомендуемый вариант – на ночь.

Хлоргексидин биглюконат – применение в быту

Очень важно правильно применять препарат при обработке кожи рук. Не рекомендуется использовать раствор совместно с мылом или другими щелочами, иначе эффективность сильно снижается. Нельзя сочетать его с йодом, это чревато дерматитами. Препарат уничтожает бактерии и на разных поверхностях, чем пользуются сейчас многие хозяйки.

Какое получил Хлоргексидина биглюконат применение в быту:

  1. Уборка. На ведро воды добавляют 1 ст. ложку раствора, можно мыть полы, кафель, стены.
  2. Обработка обуви. Смоченным тампоном протереть внутри туфель или ботинок, антисептик быстро уберет неприятный запах.
  3. Чистка кошачьего лотка. Разбавляют 2 ст. ложки на ведро воды, дают постоять 15 мин. Удаляет неприятное амбре, уничтожает бактерии.
  4. Обработка экрана мобильника. Если каждый день протереть смоченным диском сотовый, можно еще избавиться от высыпаний на щеках.
  5. Дезинфекция испарителей в кондиционерах. Раствор нужно распылить возле входного отверстия систем, хватит 200-300 мл на одну обработку.

Хлоргексидин биглюконат – противопоказания

У препарата низкая токсичность, но при глотании может вызвать неприятные симптомы. Поэтому если такое случилось во время полоскания, необходимо принять сорбенты. Сильно концентрированный раствор часто провоцирует изменение вкуса, потемнение эмали, поэтому в приготовлении полосканий важно придерживаться рецепта. Раствором нельзя промывать глаза, лечить повреждения барабанной перепонки.

Какие имеет Хлоргексидина биглюконат противопоказания:

  • открытые черепно-мозговые травмы;
  • высокая чувствительность к компонентам;
  • дерматиты;
  • аллергия;
  • непереносимость лидокаина.

 

Хлоргексидина биглюконат раствор водно-спиртовой 0,5% — Genel

Водно-спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата 0,5%

Состав: действующее вещество: хлоргексидина биглюконат — 0,05%; вспомогательное вещество: спирт изопропиловый — 70%.

Эффективное дезинфицирующее средство для обработки кожи и поверхностей, медицинских перчаток и инвентаря. Водно-спиртовой раствор хлоргексидина надежный антисептик в условиях повышенной эпидемиологической опасности. Быстро очищает и дезинфицирует руки. Без запаха.

  • флакон 100 млканистра 1 л канистра 5 л канистра 10 л
  • 60 шт12 шт1 шт1 шт
  • 6,6 кг11,2 кг5 кг10 кг
  • не выше 25 °С

в течение ежедневного курса лечения CHX. Повышенное доминирование Fusobacterium имеет большое значение, поскольку он считается промежуточным организмом между ранними и поздними колонизаторами в биопленках полости рта, способствуя созреванию биопленки и прикреплению патобионтов. Этот род преобладает в образцах пародонтального налета 27,28 и, таким образом, связан с заболеванием пародонта. Наблюдаемое более высокое производство бутирата природной биопленкой, подвергшейся воздействию CHX, также свидетельствует о более высоком Fusobacterium доминирование 23,29 . Бутират является побочным продуктом бактериального метаболизма с вредными последствиями для здоровья полости рта, вызывая воспаление в фибробластах десен 30 и разрушая эпителиальный барьер десен 31 . Что касается других биопленок, полученных in vivo, мы обнаружили, что антисептическая обработка влияет на биопленки динамическим и донорозависимым образом, при этом состав и метаболическая активность меняются после каждой обработки. Несмотря на то, что необработанные зрелые биопленки группировались вместе в соответствии с β-разнообразием, состав сообщества биопленок, обработанных CHX, явно зависел от исходного инокулята. Наши результаты подтверждают предыдущие наблюдения, в которых межличностная изменчивость микробиома была описана как одна из основных движущих сил в ответ на пероральное лечение 32,33 .

В целом наши выводы показали, что противомикробные препараты широкого спектра действия не могут гарантировать переход к здоровому состоянию. Наоборот, они могут еще больше нарушить комменсальный микробиом. Эти результаты согласуются с недавним исследованием in vivo, которое показывает, что лечение хлоргексидином, хотя и удерживало микробную нагрузку в более низких количествах, чем отсутствие лечения, делало это за счет неселективного воздействия на микробиом полости рта, что приводило к более высокой относительной численности нескольких таксонов, связанных с пародонтитом (т.е. 9).0025 Fusobacterium ) 34 . Более того, уже было показано, что антисептики повышают патогенные характеристики 35 , устойчивость к антисептикам 36 и цитотоксичность по отношению к клеткам-хозяевам 37 . По этой причине существует явная потребность в альтернативных подходах, которые не нацелены на микробиом полости рта без разбора, а целенаправленно и избирательно воздействуют на патогенные штаммы 38 (или их вирулентность — терапия вирулентностью) и способствуют или восстанавливают здоровый микробиом (про- биотики и пребиотики) 39,40,41 .

В заключение мы утверждаем, что антисептики неадекватны в качестве единственного средства для лечения биопленок полости рта. Мы заметили, что кратковременная обработка 0,12% CHX, концентрация, обычно используемая в продуктах для ухода за полостью рта, лишь временно снижает концентрацию жизнеспособных клеток. Кроме того, наши результаты показывают, что первоначальный состав микробиома сильно влиял на результат антисептической обработки, при этом характеристики, связанные с заболеванием, увеличивались после лечения в некоторых случаях. Необходимы дальнейшие эксперименты in vivo, чтобы выяснить клиническую значимость этого исследования и возможные последствия широкого использования противомикробных препаратов для ухода за полостью рта.

Materials and methods

Strains and culture

The synthetic community was assembled by 14 oral bacterial strains, eight commensal ( Streptococcus sanguinis LMG14657, Streptococcus salivarius TOVE-R, Streptococcus gordonii ATCC 49818, Streptococcus mitis DSM 12643, Streptococcus oralis (клинический изолят), Actinomyces naeslundii ATCC 51655, Actinomyces viscosus DSM 43327 и Veillonella parvula DSM 2007) and six pathobionts ( Porphyromonas gingivalis ATCC 33277, Fusobacterium nucleatum ATCC10953, Aggregatibacter actinomycetemcomitans ATCC 43718, Prevotella intermedia ATCC 25611, Streptococcus mutans ATCC 25175 and Streptococcus sobrinus ATCC 33478). Штаммы поддерживали на кровяном агаре №2 (Oxoid, Хэмпшир, Великобритания) с добавлением гемина (5 мг/мл) (Sigma Aldrich, Бельгия), менадиона (1 мг/мл) (Sigma Aldrich, Бельгия) и 5% стерильной лошадиной крови. или культивировали в жидкой среде в бульоне Brain Hearth Infusion (BHI) (Roche, Бельгия) в анаэробных условиях (80% N2, 10% h3 и 10% CO2). 9Среду 0003

BHI использовали для собранного синтетического сообщества. Эта среда обогащена 2,5 г/л муцина из свиного желудка типа III (Sigma, Diegem, Бельгия), 1,0 г/л дрожжевого экстракта (Oxoid, Хэмпшир, Великобритания), 0,1 г/л цистеина (Merck-Calbiochem), 2,0 г бикарбонат натрия (Sigma Aldrich, Бельгия), 0,25% глутаминовой кислоты (Merck-Calbiochem), 5,0 мг/л гемина (Sigma Aldrich, Бельгия), 1,0 мг/л менадиона (Sigma Aldrich, Бельгия).

Минимальная ингибирующая концентрация

МИК CHX для каждого отдельного штамма оценивали по поглощению. Точнее, 10 7 клеток/мл каждого штамма инокулировали в серийных разведениях CHX и инкубировали в течение 24 часов в анаэробных условиях. После OD 600 измеряли с помощью ридера для микротитрационных планшетов (Tecan Infinite M200 Pro; Tecan UK, Рединг, Великобритания).

Образцы микробиома языка

Образцы микробиома языка были взяты у четырех человек. Люди имели хорошее системное здоровье и не получали антибиотики в течение предыдущих 3 месяцев. Доноров просили воздерживаться от приема пищи или чистки языка/зубов в течение как минимум 2 часов перед сбором биопленки языка.

Образец биопленки языка брали путем соскоба с поверхности языка одноразовым скребком для языка (Иордания, Норвегия) три раза от задней к передней части спинки языка. Сорванную биопленку суспендировали в 5 мл восстанавливающего фосфатного буфера (8,8 г/л K 2 HPO 4 , 6,8 г/л KH 2 PO 4 и 1 г/л C 2 H 1 H ). 2 SNa (Sigma Aldrich, Бельгия)) и гомогенизировали путем пипетирования, разделяя отдельные образцы. Один миллилитр каждого образца использовали для инокуляции отдельного флакона с анаэробным пенициллином 15 мл среды BHI 2 . Образцы выращивали отдельно в планктонных условиях в течение 48 часов, прежде чем использовать их для дальнейшего выращивания биопленки.

Модель биопленки

После индивидуального выращивания 14 штаммов в бульоне BHI, как описано выше, синтетическое сообщество собирали путем добавления равных концентраций каждого штамма в среду BHI 2. Затем им давали расти в течение 48 часов в анаэробных условиях (80% N 2 , 10% H 2 и 10% CO 2 ). Впоследствии инокулят из планктонного биореактора использовали для выращивания биопленок на дисках из гидроксиапатита (HA) (диаметр 0,5 дюйма × 0,04–0,06 дюйма толщиной, VWR, Бельгия), которые помещали в модель биопленки с активным прикреплением 9.2355 42 . Образец из биореактора разводили 1:2 по объему в свежей среде BHI 2. В каждую лунку 24-луночного планшета добавляли по 2 мл новой культуры, содержащей сообщество, и инкубировали в течение 24 ч при 37°С в анаэробных условиях и встряхивании при 170 об/мин. Для следующих экспериментов использовали 24-часовые биопленки.

Та же процедура была проведена с образцами доноров, которые предварительно выращивались в BHI 2 в течение 48 часов.

Обработка

Биопленки обрабатывали CHX, помещая диски HA на 5 минут в новый 24-луночный планшет с 0,12% CHX (хлоргексидина диглюконат, Sigma Aldrich, Бельгия). Необработанные биопленки подвергали той же процедуре в стерильном PBS (фосфатно-солевой буфер, Sigma Aldrich, Бельгия). Затем их дважды промывали PBS и, наконец, помещали обратно в новый 24-луночный планшет со свежей средой BHI 2. Биопленки обрабатывали каждые 24 часа, а образцы собирали до и после обработки. Биопленки разрушали с помощью 0,05% трипсина-ЭДТА при 37°C, 350 об/мин в течение 45 минут, а затем дополнительно помещали в ванну для обработки ультразвуком (частота обработки ультразвуком 37 кГц) на 32 минуты для разрушения агрегатов.

Проточная цитометрия

Образцы разрушенной биопленки разводили в стерильном PBS и окрашивали красителем нуклеиновых кислот SYBR® Green I и йодидом пропидия, который окрашивает пермеабилизированные клетки 43 . SYBR Green I (10000-кратный концентрат в ДМСО, Invitrogen) разбавляли в 100 раз в ДМСО с фильтром 0,22 мкм (IC Millex, Merck, США) и йодиде пропидия (20 мМ в диметилсульфоксиде (ДМСО), Invitrogen, США) разбавляли до 50 раз. Образцы окрашивали красящим раствором с концентрацией 10 мкл/мл. Далее их инкубировали при 37 °С в течение 13 мин. Все образцы измеряли с помощью настольного цитометра Accuri C6+ (BD Biosciences, Бельгия). Стабильность прибора контролировали ежедневно с использованием гранул CS&T RUO (BD Biosciences, Бельгия) и проверяли для каждого измерения стабильность FL1 во времени. Синий лазер (488 нм) использовали для возбуждения пятен. Фильтры для детекторов фотоумножителей (с фиксированным коэффициентом усиления), использованные во время измерений, имели длину волны 533 нм с полосой пропускания 30 нм для зеленой флуоресценции (FL-1) и фильтр длинного пропускания 670 нм для красной флуоресценции (FL-3). Порог был установлен на детекторе 533/30   нм (FL-1) в произвольной единице 500. Графики плотности FlTC-A ~ PerCP-A использовались для рисования ворот для неповрежденных, поврежденных и мертвых клеток в соответствии с дополнительным рис. 1

Экстракция ДНК и количественная ПЦР жизнеспособности биопленок 14 штаммов

Разрушенные биопленки перед дальнейшими манипуляциями обрабатывали красителем PMAxx (Biotium, США). Экстракцию ДНК проводили путем взбивания гранул с помощью прибора PowerLyzer (Qiagen, Venlo, Нидерланды) и экстракции фенолом/хлороформом. Количество выживших бактерий определяли с помощью количественной ПЦР жизнеспособности с использованием специфических праймеров 44,45 . Измерения количественной ПЦР выполняли с помощью системы реального времени CFX96 (Bio-Rad, Temse, Бельгия). Короче говоря, метод ПЦР анализа 5′-нуклеазы Taqman использовался для обнаружения и количественного определения каждого из 14 штаммов с использованием штаммоспецифических праймеров и зондов (дополнительная таблица 1). Количественное определение основывалось на стандартной кривой плазмиды.

Выделение ДНК и секвенирование ампликонов из многовидовых биопленок

ДНК из многовидовых биопленок выделяли с помощью набора ZymoBIOMICS DNA Microprep Kit (Zymo Research, США) в соответствии с инструкциями производителя. 10 мкл экстракта геномной ДНК были отправлены в LGC genomics GmbH (Берлин, Германия) для подготовки библиотеки и секвенирования на платформе Illumina Miseq с химией v3 с праймерами 341F (5′-CCT ACG GGN GGC WGC AG -3′) и 785Rmod ( 5′-GAC TAC HVG GGT ATC TAA KCC-3′) 46 .

Среднее количество необработанных считываний на образец составляло 45712. Сборка и очистка ридов в значительной степени основывались на СОП MiSeq, описанной в лаборатории Schloss. Вкратце, mothur (v.1.40.3) использовался для сборки прочтений в контиги, выполнения фильтрации качества на основе выравнивания (выравнивание с реконструированным mothur выравниванием SILVA SEED, v. 123), удаления химер, присвоения таксономии с использованием наивного байесовского классификатор 47 и SILVA NR v132 и кластерные контиги в OTU с сходством последовательностей 97%. Все последовательности, которые были классифицированы как эукариоты, археи, хлоропласты и митохондрии, были удалены. Кроме того, если последовательности вообще нельзя было классифицировать (даже на уровне (супер)королевства), они удалялись. После вышеупомянутой фильтрации среднее число прочтений на выборку составило 279.40. Для каждой OTU репрезентативные последовательности были выбраны как наиболее распространенные последовательности в этой OTU.

Метаболическая активность

Органические кислоты в образцах измеряли с помощью компактного ионного хроматографа 761 (Metrohm, Швейцария) с колонкой Metrosep Organic acid 250/7.8 и защитной колонкой Metrosep Organic acid Guard/4.6. Элюент состоит из 1 мМ H 2 SO 4 при скорости потока 0,8 мл/мин. Производство органических кислот рассчитывали как концентрацию, обнаруженную в жидкости, в которой росла биопленка, нормализованную для концентраций органических кислот, обнаруженных в стерильной среде BHI 2 .

Анализ данных/статистика

Весь статистический анализ был выполнен в R (v3. 6.0). Таблица непредвиденных обстоятельств OTU была импортирована в R. OTU с не более чем одним считыванием в каждой выборке (синглетоны) были удалены 48 . Среднее количество прочтений на образец после удаления синглетонов составило 27866, в то время как общее количество OTU составило 2350. Графики, представляющие 20 наиболее относительно распространенных родов, были созданы с использованием пакета phyloseq 49 в R (v3.6.0). Таксономическое β-разнообразие рассчитывали на основе индекса несходства Брея-Кертиса с использованием функции ординат пакета phyloseq и отображается на графике неметрического многомерного масштабирования (nMDS).

Заявление об этике

Отбор проб биопленки языка человека был одобрен Комитетом по медицинской этике Гентского университета под номером B670201629302. Все участники дали письменное информированное согласие до их включения в исследование.

Сводка отчета

Дополнительная информация о дизайне исследования доступна в Сводке отчета по исследованию природы, связанной с этой статьей.

Доступность данных

Последовательности доступны в архиве NCBI Sequence Read Archive (SRA) под номером доступа PRJNA554992.

Ссылки

  1. Консорциум, T.H.M.P. Структура, функции и разнообразие микробиома здорового человека. Природа 486 , 207–214 (2012).

    Google ученый

  2. Hezel, M. P. & Weitzberg, E. Микробиом полости рта и гомеостаз оксида азота. Оральный дис. 21 , 7–16 (2015).

    КАС пабмед Google ученый

  3. Розье, Б. Т., Марш, П. Д. и Мира, А. Устойчивость микробиоты полости рта в здоровом состоянии: механизмы, предотвращающие дисбактериоз. Дж. Дент. Рез. 97 , 371–380 (2017).

    ПабМед Google ученый

  4. «>

    Bergstrom, J. Уровень курения и распространенность заболеваний пародонта: 40-летние тенденции в Швеции 1970–2010. Дж. Клин. Пародонтол. 41 , 952–957 (2014).

    ПабМед Google ученый

  5. Moynihan, P.J. & Kelly, S.A.M. Влияние ограничения потребления сахара на кариес: систематический обзор рекомендаций ВОЗ по информированию. Дж. Дент. Рез. 93 , 8–18 (2014).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  6. Donnell, GMC Антисептики и дезинфицирующие средства: активность, действие и устойчивость. клин. микробиол. 12 , 147–179 (1999).

    Google ученый

  7. Mcbain, A.J. et al. Влияние жидкости для полоскания рта, содержащей хлоргексидин глюконат, на жизнеспособность и восприимчивость к противомикробным препаратам in vitro оральных бактериальных экосистем. Заяв. Окружающая среда. микробиол. 69 , 4770–4776 (2003).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  8. Zaura-Arite, E., van Marle, J. & ten Cate, J.M. Исследование конофокальной микроскопии неповрежденной и обработанной хлоргексидином зубной биопленки. Дж. Дент. Рез. 80 , 1436–1440 (2001).

    КАС пабмед Google ученый

  9. Thurnheer, T., Gmu, R. & Guggenheim, B. Мультиплексный FISH-анализ шести видов бактериальной биопленки. J. Microbiol. Методы 56 , 37–47 (2004).

    КАС пабмед Google ученый

  10. Гуггенхаймрл, Б., Гирсен, Э., Шупбахл, П. и Шапироль, С. Валидация модели биопленки наддесневого налета in vitro. Дж. Дент. Рез. 80 , 363–370 (2001).

    Google ученый

  11. «>

    Праттен Дж., Барнетт П. и Уилсон М. Состав и чувствительность к хлоргексидину многовидовых биопленок оральных бактерий. Заявл. Окружающая среда. микробиол. 64 , 3515–3519 (1998).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  12. Seneviratne, C.J. et al. Хлоргексидин, инкапсулированный в наночастицы, против бактериальных биопленок в полости рта. PLoS ONE 9 , e103234 (2014).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  13. Пейяла Р., Киракоду С.С., Эберсоле Дж.Л. и Новак К.Ф. Новая модель многовидовых биопленок, в которой используются жесткие газопроницаемые линзы. Заявл. Окружающая среда. микробиол. 77 , 3413–3421 (2011).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  14. «>

    Kommerein, N. et al. Модель многовидовой биопленки полости рта для приложений скрининга с высоким содержанием. PLoS ONE 12 , e0173973 (2017).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  15. Чан, Х. С. Дж., Саймонс, М. Н. и Маранас, К. Д. SteadyCom: прогнозирование численности микробов при обеспечении стабильности сообщества. Вычисл. PLoS. биол. 13 , e1005539 (2017).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  16. Fernandez y Mostajo, M. et al. Воспроизводимая микрокосмическая биопленочная модель поддесневых микробных сообществ. J. Периодонтальная рес. 52 , 1021–1031 (2017).

    КАС пабмед Google ученый

  17. Nance, W.C. et al. Высокопроизводительная микрожидкостная биопленочная система зубного налета для визуализации и количественной оценки действия противомикробных препаратов. J. Антимикроб. Чемотер. 68 , 2550–2560 (2013).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  18. Shen, Y. et al. Экспериментальное и теоретическое исследование устойчивости многовидовых биопленок полости рта к лечению хлоргексидином. наук. Респ. 6 , 27537 (2016).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  19. Fernandez y Mostajo, M., Exterkate, RAM, Buijs, MJ, Crielaard, W. & Zaura, E. Влияние жидкостей для полоскания рта на состав и метаболическую активность пероральных биопленок, выращенных in vitro. клин. Оральное расследование. https://doi.org/10.1007/s00784-016-1876-2 (2016 г.).

  20. Gazaniga, L., Ribeiro, M., Hashizume, L.N. & Maltz, M. Влияние различных составов хлоргексидина на снижение уровня мутантных стрептококков в полости рта: систематический обзор литературы. Дж. Дент. 35 , 359–370 (2007).

    Google ученый

  21. Квинтас, В., Прада-Лопес, И., Донос, Н., Суарес-Кинтанилья, Д. и Тома, И. Нейтрализация in situ антибактериального действия 0,2% хлоргексидина на микробиоту слюны: количественная оценка субстанции . Арх. Оральный. биол. 60 , 1109–1116 (2015).

    КАС пабмед Google ученый

  22. García-Caballero, L. et al. Влияние хлоргексидина на флору слюны и бляшкообразную биопленку: модель in situ. PLoS ONE 8 , 1–10 (2013).

    Google ученый

  23. Такахаши, Н. Метаболизм микробиома полости рта: из «Кто они?» на «Что они делают?». Крит. Преподобный Орал. биол. Мед. 94 , 1628–1637 (2015).

    КАС Google ученый

  24. «>

    Diaz, P. I. et al. Молекулярная характеристика предметно-специфической микрофлоры полости рта при начальной колонизации эмали. Заяв. Окружающая среда. микробиол. 72 , 2837–2848 (2006).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  25. de Soet, J.J., Nyvad, B. & Kilian, M. Выработка кислоты пероральным путем, связанная со штаммом. Кариес Res. 34 , 486–490 (2000).

    ПабМед Google ученый

  26. Марк, Дж. Л., Россетти, Б. Дж., Рикен, К. В., Дьюхерст, Ф. Э. и Бориси, Г. Г. Биогеография микробиома полости рта человека в микронном масштабе. ПНАС 791–800 (2016). https://doi.org/10.1073/pnas.1522149113.

  27. Li, Y. et al. Филогенетические и функциональные сдвиги генной структуры микробиома полости рта у больных пародонтитом. ИСМЕ Дж. 8 , 1879–1891 (2014).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  28. Рокас, И. Н. и Сикейра, Дж. Ф. Микробиота корневых каналов зубов с хроническим верхушечным периодонтитом. Дж. Клин. микробиол. 46 , 3599–3606 (2008).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  29. Джорт П., Тернер К. Х., Гумус П., Низам Н. и Будунели Н. Метатранскриптомика микробиома полости рта человека в норме и при болезни. MBio 5 , e01012–e01014 (2014).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  30. Чанг, М.-К. и другие. Бутират индуцирует выработку активных форм кислорода и влияет на ход клеточного цикла в фибробластах десен человека. J. Периодонтальная рес. 48 , 66–73 (2013).

    КАС пабмед Google ученый

  31. «>

    Лю, Дж. и др. Бутират, а не LPS, нарушает гомеостаз эпителия десны, подавляя межклеточные соединения и вызывая пироптоз. Дж. Клин. Пародонтол. 46 , 894–907 (2019).

    КАС пабмед Google ученый

  32. Filoche, S. K., Soma, D., Van Bekkum, M. & Sissons, C. H. Бляшки у разных людей вызывают разные реакции микробиоты на антисептическую обработку полости рта. ФЭМС Иммунол. Мед. микробиол. 54 , 27–36 (2008).

    КАС пабмед Google ученый

  33. Биззарро, С. и др. Микробный профиль на исходном уровне, а не применение антибиотиков, определяют клинический исход лечения хронического периодонтита. наук. 6 , 1–13 (2016).

    Google ученый

  34. Аль-камель, А. и др. Поддесневой микробиом экспериментального гингивита: сдвиги, связанные с использованием хлоргексидина и N-ацетилцистеина для полоскания рта. J. Oral Microbiol. 11 , 1608141 (2019).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  35. Лю, Г. и др. Сдвиг в поддесневом микробиоме после удаления зубного камня и полировки корней при генерализованном агрессивном пародонтите. Дж. Клин. Пародонтол. 45 , 440–452 (2018).

    КАС пабмед Google ученый

  36. Verspecht, T. et al. Развитие антисептической адаптации и перекрестной адаптации у отдельных оральных патогенов in vitro. Науч. Реп . https://doi.org/10.1038/s41598-019-44822-y (2019 г.).

  37. Мюллер, Х. Д., Эйк, С., Мориц, А., Лусси, А. и Грубер, Р. Цитотоксичность и антимикробная активность полосканий для полости рта in vitro. Биомед. Рез. Междунар. 2017 , 4019723 (2017).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  38. «>

    Page, R.C. et al. Иммунизация Macaca fascicularis против экспериментального периодонтита с использованием вакцины, содержащей цистеиновые протеазы, очищенные от Porphyromonas gingivalis. Пероральный микробиол. Иммунол. 22 , 162–168 (2007).

    КАС пабмед Google ученый

  39. Teughels, W. et al. Клинические и микробиологические эффекты пробиотиков Lactobacillus reuteri при лечении хронического пародонтита: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование. Дж. Клин. Пародонтол. 40 , 1025–1035 (2013).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  40. Лопес-Лопес, А., Камело-Кастильо, А., Феррер, доктор медицинских наук, Саймон-Соро, А. и Мира, А. Обитатели ниши, связанные со здоровьем, в качестве пероральных пробиотиков: случай Streptococcus dentisani. Фронт. микробиол. 8 , 1–12 (2017).

    Google ученый

  41. Сломка В. и др. Пищевая стимуляция комменсальных бактерий полости рта подавляет патогены: концепция пребиотиков. Дж. Клин. Пародонтол. 44 , 344–352 (2017).

    КАС пабмед Google ученый

  42. Exterkate, R. A. M., Crielaard, W. & Ten Cate, J. M. Различная реакция на аминофторид Streptococcus mutans и полимикробных биопленок в новой высокопроизводительной модели активного прикрепления. Кариес Res. 44 , 372–379 (2010).

    КАС пабмед Google ученый

  43. Ван Невель С., Кетч С., Вейленманн Х., Бун Н. и Хаммес Ф. Рутинный бактериальный анализ с помощью автоматизированной проточной цитометрии. J. Microbiol. Методы 94 , 73–76 (2013).

    ПабМед Google ученый

  44. «>

    Loozen, G., Boon, N., Pauwels, M., Quirynen, M. & Teughels, W. Живая/мертвая полимеразная цепная реакция в реальном времени для оценки новых методов лечения патологий, связанных с зубным налетом. Мол. Oral Microbiol 26 , 253–261 (2011).

    КАС пабмед Google ученый

  45. Herrero, E. R. et al. Дисбиотические биопленки нарушают регуляцию пародонтальной воспалительной реакции. Дж. Дент. Рез. 97 , 547–555 (2018).

    КАС пабмед Google ученый

  46. Клиндворт, А. и др. Оценка общих праймеров для ПЦР гена рибосомной РНК 16S для классических исследований и исследований разнообразия на основе секвенирования следующего поколения. Nucleic Acids Res 41 , 1–11 (2013).

    Google ученый

  47. Wang, Q., Garrity, G. M., Tiedje, J.M., Cole, J.R. & Al, W.E.T. Наивный байесовский классификатор для быстрого отнесения последовательностей рРНК к новой таксономии бактерий. Заяв. Окружающая среда. микробиол. 73 , 5261–5267 (2007).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  48. McMurdie, P.J. & Holmes, S. Не тратить, не хотеть: почему недопустимо разреживание данных о микробиоме. Вычисление PLoS. биол. 10 , e1003531 (2014).

    ПабМед ПабМед Центральный Google ученый

  49. Mcmurdie, P. J. & Holmes, S. phyloseq: пакет R для воспроизводимого интерактивного анализа и графики данных переписи микробиома. PLoS ONE 8 , e61217 (2013).

    КАС пабмед ПабМед Центральный Google ученый

Ссылки для скачивания

Благодарности

Эта работа была поддержана «Fonds voor Wetenschappelijk Onderzoek» — FWO (G0B2719N). Мы благодарим Cristina Garcia Timermans, Jasmine Heyse и Josefien Van Landuyt за критическое прочтение рукописи.

Информация об авторах

Авторы и организации

  1. Центр микробной экологии и технологии, Coupure Links 653, 9000, Gent, Belgium

    Ioanna Chatzigiannidou, Tom Van de Wiele & Nico Boon

  2. Department of Oral Health Sciences, KU Leuven, Kapucijnenvoer 33, 3000, Leuven, Belgium

    Wim Teughels

Authors

  1. Ioanna Chatzigiannidou

    Посмотреть публикации автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  2. Wim Teughels

    Посмотреть публикации автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  3. Tom Van de Wiele

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

  4. Nico Boon

    Просмотр публикаций автора

    Вы также можете искать этого автора в PubMed Google Scholar

Contributions

Все авторы задумали и разработали исследование. IC. провел эксперименты и проанализировал данные. IC. написал рукопись. Все авторы рассмотрели и одобрили рукопись.

Автор, ответственный за переписку

Переписка с Нико Бун.

Заявление об этике

Конкурирующие интересы

Авторы не заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Дополнительная информация

Примечание издателя Springer Nature остается нейтральной в отношении юрисдикционных претензий в опубликованных картах и ​​институциональной принадлежности.

Дополнительная информация

Дополнительная информация

Сводка отчетов

Права и разрешения

Открытый доступ Эта статья находится под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 International License, которая разрешает использование, совместное использование, адаптацию, распространение и воспроизведение на любом носителе или в любом формате, при условии, что вы должным образом указываете автора (авторов) и источник, предоставляете ссылку на лицензию Creative Commons и указываете, были ли внесены изменения. Изображения или другие сторонние материалы в этой статье включены в лицензию Creative Commons для статьи, если иное не указано в кредитной строке материала. Если материал не включен в лицензию Creative Commons статьи, а ваше предполагаемое использование не разрешено законом или выходит за рамки разрешенного использования, вам необходимо получить разрешение непосредственно от правообладателя. Чтобы просмотреть копию этой лицензии, посетите http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.

Перепечатка и разрешения

Об этой статье

Эта статья цитируется

  • Сравнение модулирующего действия трех структурно сходных потенциальных пребиотических субстратов на многовидовую пероральную биопленку in vitro.

    • Тим Верспехт
    • Ваннес Ван Холм
    • Вим Тьюгелс

    Научные отчеты (2021)

  • 908:00 Ограниченная антимикробная эффективность антисептиков для ухода за полостью рта в биопленках микрокосма и фенотипическая адаптация бактерий при повторном воздействии
    • София Р. Шварц
    • Стефани Хирш
    • Фабиан Цеплик

    Клинические исследования полости рта (2021)

Средства гигиены полости рта ПРЕЗИДЕНТ на основе хлоргексидина для профилактики воспалительных заболеваний полости рта

Патогенная микрофлора – ведущий фактор патогенеза заболеваний зубов и тканей пародонта; поэтому при лечении и профилактике большое внимание должно быть направлено на удаление зубных отложений и непосредственное подавление жизнедеятельности оральных возбудителей. С зубным налетом можно бороться механическими средствами (с помощью зубной щетки, нити, ершиков для межзубных промежутков) и, при необходимости, химическими средствами. Согласно многочисленным отечественным и зарубежным исследованиям, наиболее изученным, широко применяемым и эффективным антисептиком является хлоргексидин.

Молекулярный состав хлоргексидина глюконата включает дихлорсодержащие производные бигуанида и обладает высокой активностью в химической борьбе с зубным налетом. Хлоргексидин проявляет антисептическое действие благодаря способности образовывать химические связи между положительно заряженной молекулой лекарства и анионными группами (фосфатами, сульфатами, карбоксильной группой), присутствующими в стенке бактериальной клетки. Хлоргексидин проникает во внутриклеточные мембраны бактериальных клеток, осаждается на цитоплазме и инфильтрирует мембранную функцию, способствуя значительному повышению проницаемости клеток, изменяя осмотический баланс, нарушая целостность клетки, осаждая цитоплазматическое содержимое бактерий. , разрушает ДНК и нарушает синтез ДНК в микроорганизмах, что в конечном итоге приводит к гибели бактериальной клетки. Хлоргексидин эффективен в отношении большинства грамположительных и грамотрицательных аэробных и анаэробных бактерий, грибов Candida, дерматофитов, простейших, липофильных вирусов, вирусов герпеса и др. Хлоргексидин сохраняет активность в присутствии гноя, крови, различных выделений, органических веществ. Однако он не нарушает функциональную активность лактобактерий и бифидобактерий.

Хлоргексидин оказывает бактериостатическое действие при использовании в низких концентрациях и действует как бактерицидное средство при использовании в более высоких концентрациях. Благодаря своим катионным свойствам хлоргексидин способен связываться со слизистой оболочкой полости рта, с гидроксиапатитом эмали, с вторичной пленкой на поверхности зуба, с белками слюны, с бактериями и бактериальными клеточными полисахаридами. Он медленно высвобождается в полости рта и сохраняет концентрацию, эффективно воздействующую на микроорганизмы, в течение 24 часов. Этот эффект называется субстантивностью и является одним из важнейших свойств, делающих хлоргексидин наиболее эффективным антисептиком.

После трехдневного применения хлоргексидина в виде полосканий антибактериальный эффект сохраняется в течение 10–14 дней, а при применении до 9 дней эффект увеличивается до 11 недель.

Взаимодействие других препаратов с хлоргексидином: несовместим с лаурилсульфатом натрия (пенообразователь, содержащийся практически во всех зубных пастах), несовместим с анионным фторидом, несовместим со щелочью, используется в нейтральной среде (рН 5–8). Использование жесткой воды снижает бактерицидные свойства хлоргексидина, этанол усиливает антисептическую активность хлоргексидина.

При использовании обычной жидкости для полоскания рта с хлоргексидином без дополнительных средств появляются следующие побочные эффекты: образование желтого или желто-коричневого налета на поверхности зубов, протезов и на спинке языка, изменение вкусовой чувствительности рецепторы языка, ксеростомия.

Опытные технологи итальянского завода Betafarma разработали гигиенический комплекс на основе хлоргексидина, применяемый для предотвращения образования налета на зубах и ортодонтических конструкциях, защиты слизистой оболочки от воспаления в труднодоступных местах, профилактики и лечения заболеваний полости рта, вызванных активность патогенных микроорганизмов, в том числе после стоматологических вмешательств.

Высокоэффективные препараты ПРЕЗИДЕНТ, содержащие хлоргексидин , показаны для применения в профилактике и комплексном лечении заболеваний полости рта. В состав продуктов входят специальные пасты и ополаскиватели для полости рта – мощная защита от бактерий.

Активными компонентами этого комплекса являются экстракты лекарственных трав и растений из северной части Италии, экологически чистого региона, что гарантирует доказанное действие без вреда для здоровья человека:

  • Экстракт Chamomilla Recutita – оказывает противовоспалительное, обезболивающее действие, усиливает регенеративные процессы;
  • Экстракт мальвы лесной – противовоспалительное, ранозаживляющее действие;
  • Экстракт эхинацеи узколистной – иммуностимулирующее, антибактериальное действие.

Бальзам для десен PRESIDENT Effect – средство усиленного действия: укрепляет десны, эффективно очищает слизистую оболочку полости рта от бактериального налета, целенаправленно воздействует на очаги локального воспаления, снимает отек десен, и оказывает ранозаживляющее действие.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *